Danielle da Silva Trentin

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  • Última atualização do currículo em 13/10/2018


Graduação em Farmácia (2007) com ênfase em Análises Clínicas (2010) pela Universidade Federal do Rio Grande do Sul - UFRGS. Possui Mestrado (2009) e Doutorado (2013) em Cîências Farmacêuticas pelo Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas (PPGCF - UFRGS). Realizou Pós-Doutorado (PPGCF e PPGBCM - UFRGS) junto à Rede de Pesquisa e Formação em Biofuncionalização de Superfícies - Rede Nanobiotec-Brasil/CAPES (2013 - 2014) e com bolsa CAPES/PNPD (2014 - 2016). Atualmente é professora adjunta A na Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (UFCSPA) e membro do Programa de Pós-Graduação em Biociências (PPGBio). Possui experiência na área de Microbiologia, com foco em fatores de virulência bacterianos, especialmente no controle de biofilmes patogênicos com produtos naturais e sintéticos e através de modificações de superfícies. Coordena projeto envolvendo a criação e uso de larvas de Galleria mellonella como modelo experimental alternativo para avaliação in vivo da patogenicidade bacteriana e eficácia de compostos (edital Universal/CNPq). Participa como colaboradora de projeto no edital PRONEM/FAPERGS e PPSUS/FAPERGS. Recebeu Menção Honrosa no Prêmio Capes de Tese 2014 (área: Farmácia). É Membro da Sociedade Brasileira de Microbiologia (SBM) e da Associação Brasileira de Ciências Farmacêuticas (ABCF). (Texto informado pelo autor)


Identificação


Nome
Danielle da Silva Trentin
Nome em citações bibliográficas
TRENTIN, D.S.;TRENTIN, DdaS.;TRENTIN, D.;TRENTIN, DANIELLE DA SILVA;TRENTIN, DANIELLE SILVA;Silva Trentin, Danielle;Trentin, D.S;DA SILVA TRENTIN, DANIELLE;TRENTIN, DANIELLE S

Endereço


Endereço Profissional
Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, Departamento de Ciências Básicas da Saúde.
Rua Sarmento Leite
Centro Histórico
90050170 - Porto Alegre, RS - Brasil
Telefone: (51) 33038741


Formação acadêmica/titulação


2009 - 2013
Doutorado em Ciências Farmacêuticas.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Título: Estratégias de combate à adesão de bactérias patogênicas e formação de biofilmes: prospecção de fitocompostos e modificações de superfícies visando uso biomédico (grau de doutor obtido com indicação de louvor), Ano de obtenção: 2013.
Orientador: Alexandre José Macedo.
Coorientador: Raquel Brandt Giordani.
Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.
Palavras-chave: Pseudomonas aeruginosa; Staphylococcus epidermidis; adesão bacteriana e biofilmes; modificação de superfícies; produtos naturais - taninos; descarga de plasma iônico.
Grande área: Ciências da Saúde
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: Química de produtos naturais.
Grande Área: Engenharias / Área: Engenharia de Materiais e Metalúrgica / Subárea: Modificação de superfícies poliméricas.
2008 - 2009
Mestrado em Ciências Farmacêuticas.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Título: Bactéria associada à esponja marinha como fonte de metabólitos bioativos: atividade antibiofilme e antimicrobiana,Ano de Obtenção: 2009.
Orientador: Prof. Dr. Alexandre José Macedo.
Bolsista do(a): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, CNPq, Brasil.
Palavras-chave: biofilmes; Staphylococcus epidermidis; esponjas marinhas; Darwinella sp.; quorum sensing.
Grande área: Ciências Biológicas
Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Bacteriologia.
2008 - 2010
Aperfeiçoamento em Ênfase em Análises Clínicas.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Título: Polystyrene surface treatment effect upon Staphylococcus epidermidis adhesion. Ano de finalização: 2010.
Orientador: Dr. Ana Lúcia Peixoto de Freitas.
2003 - 2007
Graduação em Farmácia.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Título: Tigeciclina: aspectos farmacológicos e resposta in vitro frente a Staphylococcus spp..
Orientador: Dr. Ana Lúcia Peixoto de Freitas.


Pós-doutorado


2016
Pós-Doutorado.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.
Grande área: Ciências Biológicas
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: Planejamento de fármacos.
Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Galleria mellonella.
2015 - 2016
Pós-Doutorado.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.
Grande área: Ciências Biológicas
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: Bacteriologia - adesão bacteriana e biofilmes.
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: Química de produtos naturais.
2013 - 2015
Pós-Doutorado.
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Bolsista do(a): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior, CAPES, Brasil.
Grande área: Ciências da Saúde
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: ANÁLISES CLÍNICAS / Especialidade: Adesão bacteriana e formação de biofilmes.
Grande Área: Engenharias / Área: Engenharia de Materiais e Metalúrgica / Subárea: Modificação de superfícies poliméricas.


Formação Complementar


2017
Formação Docente Inicial. (Carga horária: 30h).
Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, UFCSPA, Brasil.
2017 - 2017
Oficina do Ambiente Virtual de Aprendizagem Moodle. (Carga horária: 10h).
Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, UFCSPA, Brasil.
2017 - 2017
Ambientação acadêmica. (Carga horária: 30h).
Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, UFCSPA, Brasil.
2015 - 2015
Visita técnica - Criação de Galleria mellonella.
Universidade Federal do Rio de Janeiro, UFRJ, Brasil.
2012 - 2012
MICROSCOPIA E PATOGENICIDADE BACTERIANA. (Carga horária: 4h).
Sociedade Brasileira de Microbiologia, SBM, Brasil.
2012 - 2012
Visita técnica - Microscopia Confocal a Laser. (Carga horária: 32h).
Center for Biofilm Engineering - Montana State University, CBE - MSU, Estados Unidos.
2011 - 2011
Patogenicidade Bacteriana. (Carga horária: 6h).
Sociedade Brasileira de Microbiologia, SBM, Brasil.
2011 - 2011
Introdução aos biomateriais e engenharia de tecido. (Carga horária: 16h).
Universidade Federal de Minas Gerais, UFMG, Brasil.
2010 - 2010
PROCAD: Laboratório de Biologia de Fungos. (Carga horária: 200h).
Universidade Estadual de Santa Cruz, UESC, Brasil.
2008 - 2008
Biologia Molecular aplicada às Análises Clínicas. (Carga horária: 15h).
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
2008 - 2008
Microbiologia clínica: processar material sem erro. (Carga horária: 4h).
Sociedade Brasileira de Microbiologia, SBM, Brasil.
2008 - 2008
Novos padrões de resistência. (Carga horária: 4h).
Sociedade Brasileira de Microbiologia, SBM, Brasil.
2007 - 2007
Atualidades em Análises Clínicas. (Carga horária: 15h).
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
2006 - 2006
Perícia e Medicina Legal. (Carga horária: 12h).
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
2004 - 2004
II Curso de Fisiopatologia. (Carga horária: 8h).
Fundação Faculdade Federal de Ciências Médicas de Porto Alegre, FFFCMPA, Brasil.
2003 - 2003
Estágio - estacagem e armazenamento medicamentos. (Carga horária: 144h).
Hospital Universitário São Francisco de Paula, HUSP, Brasil.
1999 - 2000
Idioma inglês. (Carga horária: 175h).
Wizard- Escola de Idiomas, WIZARD, Brasil.


Atuação Profissional



Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, UFCSPA, Brasil.
Vínculo institucional

2017 - Atual
Vínculo: Servidor Público, Enquadramento Funcional: Professora Adjunta A1, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.

Atividades

04/2018 - Atual
Estágios , Departamento de Ciências Básicas da Saúde, .

Estágio realizado
Supervisão de estágio curricular obrigatório na área de microbiologia.
03/2018 - Atual
Ensino, Fisioterapia, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia
08/2017 - Atual
Ensino, Medicina, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia Médica
08/2017 - Atual
Ensino, Ciências da Saúde, Nível: Pós-Graduação

Disciplinas ministradas
Princípios da Interação Patógeno-Hospedeiro
08/2017 - Atual
Ensino, Biomedicina, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia e Virologia - Diurno
08/2017 - Atual
Ensino, BIOCIÊNCIAS, Nível: Pós-Graduação

Disciplinas ministradas
Tópicos Avançados em Microbiologia e Biotecnologia
02/2017 - Atual
Pesquisa e desenvolvimento , Programa de Pós-Graduação em Biociências, .

02/2017 - Atual
Ensino, Enfermagem, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia
02/2017 - Atual
Ensino, Farmácia, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia
02/2017 - Atual
Ensino, Biomedicina, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia e Virologia - Noturno

Universidade Federal do Rio Grande, FURG, Brasil.
Vínculo institucional

2016 - 2017
Vínculo: , Enquadramento Funcional: Professora Adjunta A1, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.


Universidade Federal do Rio Grande do Sul, UFRGS, Brasil.
Vínculo institucional

2014 - 2016
Vínculo: Colaborador, Enquadramento Funcional: Colaborador, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.

Vínculo institucional

2014 - 2016
Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Pós-doutoranda, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.

Vínculo institucional

2013 - 2014
Vínculo: Pós-doutoranda, Enquadramento Funcional: Pós-doutoranda
Outras informações
Projeto em desenvolvimento: "Avaliação da formação de biofilme de bactérias patogênicas sobre superfícies biofuncionalizadas"

Vínculo institucional

2009 - 2013
Vínculo: Doutoranda, Enquadramento Funcional: Doutoranda - Bolsista CAPES, Carga horária: 40, Regime: Dedicação exclusiva.
Outras informações
Tese: Estratégias de combate à adesão de bactérias patogênicas e formação de biofilmes: prospecção de fitocompostos e modificações de superfícies visando uso biomédico Estágio docente obrigatório na disciplina de Bacteriologia Clínica do Curso de Farmácia com ênfase em Análises Clínicas - UFRGS. Período: 08/2011 a 09/2011 Carga horária: 30 h Aulas teórico - práticas e práticas dos seguintes temas: Identificação laboratorial de Staphylococcus spp, Streptococcus spp, Enterococcus spp e bacilos Gram negativos. Supervisão: Prof. Dr. Afonso Luis Barth e Prof. Dra. Ana Lúcia Peixoto de Freitas.

Vínculo institucional

2008 - 2009
Vínculo: Mestranda, Enquadramento Funcional: Mestranda-Bolsista CNPq, Carga horária: 40
Outras informações
Dissertação: Bactéria associada à esponja marinha como fonte de metabólitos bioativos: atividade antibiofilme e antimicrobiana. Estágio docente obrigatório na disciplina de Tecnologia Bioquímica do Curso de Farmácia da UFRGS. Período: 08/2008 a 09/2008 Carga Horária: 15 h. Aulas teórico-práticas, práticas e teóricas sobre produção de antibióticos por micro-organismos. Supervisão: Prof. Dr. Alexandre José Macedo

Vínculo institucional

2006 - 2008
Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Bolsista de Extensão Universitária, Carga horária: 20
Outras informações
- Estágio extracurricular de Extensão Universitária desenvolvido no Laboratório de Análises Clínicas da Faculdade de Farmácia UFRGS, totalizando 1120 h de estágio. Setor de bacteriologia, com ênfase em urocultura, coprocultura e exame cultural de secreção conjuntival - identificação bacteriana e perfil de suscetibilidade aos antimicrobianos. Orientação: Prof. Dr. Ana Lúcia Souza Antunes e Prof. Dr. Ana Lúcia Peixoto de Freitas - Projeto de Extensão: "Estudo de secreções e raspados conjuntivais" (07/2007 a 12/2007). Orientação: Prof. Dr. Ana Lúcia Souza Antunes e Prof. Dr. Ana Lúcia Peixoto de Freitas

Vínculo institucional

2004 - 2007
Vínculo: Bolsista, Enquadramento Funcional: Bolsista de Iniciação Científica, Carga horária: 20
Outras informações
Estágio extracurricular de Iniciação Científica desenvolvido no Departamento de Bioquímica UFRGS, totalizando 2600 horas de estágio. Orientação: Prof. Dr. João José Sarkis Projeto: "Ectonucleotidases e nucleotidases solúveis: avaliação das atividades em condições fisiológicas e patológicas".

Atividades

12/2014 - 11/2016
Pesquisa e desenvolvimento , Faculdade de Farmácia, .


Universidade Federal de Pelotas, UFPEL, Brasil.
Vínculo institucional

2013 - 2014
Vínculo: Docente, Enquadramento Funcional: Professor substituto, Carga horária: 40
Outras informações
Departamento de Microbiologia e Parasitologia do Instituto de Biologia - UFPel

Atividades

03/2014 - 04/2014
Ensino, Farmácia, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia Básica
03/2014 - 04/2014
Ensino, Odontologia, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia e Imunologia para Odontologia
11/2013 - 02/2014
Ensino, Enfermagem e Obstetrícia, Nível: Graduação

Disciplinas ministradas
Microbiologia e Imunologia - Microbiologia Geral, Bacteriologia especial, Virologia especial, Micologia especial e Imunologia Geral

Irmandade Santa Casa de Misericórdia de Porto Alegre, ISCMPA, Brasil.
Vínculo institucional

2010 - 2010
Vínculo: Estagiário curricular, Enquadramento Funcional: Estagiário, Carga horária: 30
Outras informações
Estágio integrante e obrigatório da ênfase em Análises Clínicas, realizado no Laboratório Central do ISCMPA nos setores de Bioquímica, Hematologia, Imunologia, Bacteriologia, Parasitologia e Uroanálise (Total 440h).


Hospital de Clínicas de Porto Alegre, HCPA, Brasil.
Vínculo institucional

2007 - 2007
Vínculo: Estagiário curricular, Enquadramento Funcional: Estagiário, Carga horária: 20
Outras informações
Estágio integrante e obrigatório do Curso de Graduação em Farmácia - Atividades: armazenamento de medicamentos e materiais médico-hospitalares na farmácia central e no almoxarifado; fracionamento de medicamentos na farmácia central; acompanhamento de preparo de quimioterapias e de nutrições parenterais; manipulação na farmácia industrial, acompanhamento no centro de informações sobre medicamentos; e dispensação e atenção farmacêutica na UBS Santa Cecília (Total 320 h)



Linhas de pesquisa


1.
FATORES DE VIRULÊNCIA BACTERIANOS

Objetivo: Estudar aspectos que envolvem a produção de fatores de virulência bacterianos (formação de biofilmes, produção de toxinas, enzimas, pigmentos, sistema quorum sensing); avaliar a modulação destes fatores de virulência por produtos naturais e sintéticos; produzir superfícies anti-infectivas utilizando compostos bioativos; estudar in vivo a virulência bacteriana, bem como a ação e toxicidade de compostos, utilizando o modelo experimental invertebrado de larvas de Galleria mellonella.
Grande área: Ciências Biológicas
Grande Área: Ciências Biológicas / Área: Microbiologia / Subárea: Microbiologia Aplicada / Especialidade: Microbiologia Médica.
Grande Área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: Química de produtos naturais.
Palavras-chave: antimicrobianos; antivirulência; virulência bacteriana; compostos bioativos; coating de superfícies; Galleria mellonella.
2.
"Estudos funcionais e estruturais de moléculas com potencial biotecnológico"
3.
"Identificação de compostos naturais e sintéticos ou fármacos capazes de atenuar a virulência bacteriana em estudos in vitro e in vivo com o modelo experimental de larvas de Galleria mellonella"


Projetos de pesquisa


2017 - Atual
CHAMADA FAPERGS/MS/CNPq/SESRS n. 03/2017 (PPSUS) - Streptococcus pneumoniae isolados de portadores: fatores de risco para colonização, virulência dos sorotipos e efeito da vacina conjugada 10-valente
Descrição: Streptococcus pneumoniae é responsável por cerca de 50% das pneumonias comunitárias em todo o mundo, acometendo principalmente crianças e idosos. Em 2010 o Brasil passou a disponibilizar a vacina pneumocócica conjugada 10-valente (PCV-10) para crianças. Desde então, mudanças na prevalência de determinados sorotipos tem sido observada em pacientes adultos com doença pneumocócica invasiva (DPI). Em especial o sorotipo 19A, o qual não está incluído na formulação da vacina PCV-10, mas sim na PCV-13. A colonização do trato respiratório superior pelo S. pneumoniae é o primeiro passo para o processo infeccioso, o qual é facilitado por fatores de risco do indivíduo, virulência do sorotipo e co-colonização com outros micro-organismos. Para conhecimento dos pneumococos circulantes na nossa população pós-vacina, e ainda, avaliação do seu efeito imunoprofilático direto e indireto, é objetivo deste projeto identificar a colonização em crianças e idosos e caracterizar os pneumococos quanto sua virulência. Para condução deste trabalho serão coletados swabs da nasofaringe (NF) de crianças de até 5 anos e swabs de NF e orofaringe (OF) de adultos com idade ≥ 65 anos, ambos grupos ambulatoriais e assintomáticos para doenças respiratórias. As amostras serão submetidas a técnicas microbiológicas fenotípicas e genotípicas, além de testes in vivo para avaliação da proteína Pht, produção de biofilme, virulência no modelo animal Galleria mellonella e ainda co-colonização com vírus respiratórios. Adicionalmente, através dos dados obtidos serão estabelecidas hipóteses para justificar o aumento de DPI pelos sorotipos não vacinais e avaliar a necessidade da implementação da PCV-13 no calendário vacinal nacional. Espera-se também esclarecer quais principais características do indivíduo e do micro-organismo envolvidas na conversão da colonização ao estabelecimento da doença..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (1) Doutorado: (2) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Integrante / Cícero Armídio Gomes Dias - Coordenador / Juliana Comerlato - Integrante / Pedro Alves d'Azevedo - Integrante / Vlademir Cantarelli - Integrante / Mariana Preussler Mott - Integrante / Gabriela Rosa da Cunha - Integrante / Emílio Moriguchi - Integrante.
2017 - Atual
CHAMADA PÚBLICA DCIT Nº 01/2017- PROGRAMA DE APOIO AOS POLOS TECNOLÓGICOS. Diagnóstico de infecções de difícil tratamento do Sistema Nervoso Central e Desenvolvimento de Novas Estratégias Terapêuticas
Descrição: A etiologia das infecções do Sistema Nervoso Central (SNC) representa um grande desafio clínico, sendo que mais de 50% dos casos não possuem um diagnóstico etiológico, de acordo com dados americanos. No Brasil, não encontramos dados consolidados em relação ao número de casos não diagnosticados que, possivelmente, seja ainda maior. Além dos casos de infecções do SNC ditas adquiridas na comunidade, das quais cerca de 30% resultam em graves sequelas ou, até mesmo, a morte do paciente em razão da dificuldade na determinação do agente etiológico e, consequentemente, impossibilidade de um tratamento adequado e específico, existem os casos de infecção do SNC de ainda mais difícil tratamento. Dentre as principais categorias encontram-se os pacientes que utilizam Derivação Ventricular Externa (DVE) ou outros implantes neurocirúrgicos, pacientes imunodeprimidos, pacientes com espondilodiscite, abscessos epidurais ou osteomielites de coluna vertebral e aqueles que apresentam infecções pós-operatórias, como por exemplo, infecções pós cirurgias para retirada de tumor cerebral, cirurgias para controle de hemorragia intracraniana ou correção de malformações arteriovenosas. Bactérias muito resistentes a antibióticos são encontradas em diversos pacientes que enquadram-se nos casos previamente citados. No entanto, os protocolos de conduta clínica disponíveis referem-se ao manejo empírico das infecções causadas por cepas sensíveis aos antibióticos mais comumente utilizados, desconsiderando os casos de bactérias resistentes a antibióticos e demonstrando, assim, a necessidade no investimento em estudos para uma rápida identificação do agente etiológico e desenvolvimento de novas estratégias terapêuticas. As novas tecnologias de sequenciamento aliadas à análise metagenômica têm o potencial de contribuir para o entendimento e a identificação dos agentes etiológicos das infecções de difícil tratamento do Sistema Nervoso Central. Um estudo publicado em 2016, realizado por médicos e pesquisadores das áreas de Bioinformática e Biologia Computacional da Universidade Johns Hopkins, demonstrou, de forma inédita até então, a utilidade da análise metagenômica para o diagnóstico de infecções do SNC. Trata-se de projeto inédito no Brasil, enormemente inovador mesmo quando consideramos o panorama mundial, e que tem o potencial de contribuir para resolução de casos de difícil controle e tratamento, diminuindo os custos hospitalares tanto em relação ao tempo de internação dos pacientes como em relação aos tratamentos com antibióticos caríssimos comumente utilizados e que se mostram, muitas vezes, ineficientes e incapazes de impedir o óbito do paciente. Adicionalmente, pretendemos atuar no desenvolvimento de novas estratégias terapêuticas para essas infecções através do desenho racional de fármacos e adequação das estratégias de tratamento existentes após reconhecimento do microrganismo causador pela análise metagenômica, bem como no desenvolvimento de protocolos e sistemas computacionais otimizados para análise de dados metagenômicos. A Unidade de Genômica e Biologia Computacional tem potencial para se tornar o laboratório de referência no Rio Grande do Sul para análise de amostras provenientes de pacientes com infecções de difícil tratamento do Sistema Nervoso Central, contribuindo de maneira significativa para a melhoria do setor de Saúde Pública Gaúcho, com impactos visíveis para a comunidade de médicos, pacientes e seus familiares..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
2016 - Atual
"Núcleo de Estudos Básicos e Aplicados em Adesão Microbiana: aspectos importantes na saúde humana e na indústria" - EDITAL PRONEM FAPERGS/CNPq 11/2014 PROGRAMA DE APOIO A NÚCLEOS EMERGENTES/FAPERGS/CNPq (processo n° xxx)

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 07/06/2016.
Descrição: O presente projeto tem como principal objetivo focalizar esforços de um grupo de pesquisadores que já atuam na área de adesão microbiana (bacteriana e parasitária) em aspectos que envolvem a saúde humana e o setor industrial. Esta proposta possui fundamental importância para o nosso Estado na busca de novas estratégias para combater bactérias causadoras de infecções hospitalares e parasitos responsáveis pela Doença Sexualmente Transmissível não-viral mais comum no mundo, bem como em estudos da incrustação em materiais de importância para o setor naval gaúcho..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Mestrado acadêmico: (2) / Doutorado: (5) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Integrante / ALEXANDRE JOSÉ MACEDO - Coordenador / Tiana Tasca - Integrante / Karine Rigon Zimmer - Integrante / Erik Muxagata - Integrante.
2016 - Atual
"COFECUB: Prospecção e Desenvolvimento de Novos Peptídeos e Peptidomiméticos Ativos: Antibiofilme e Antitumoral" (processo 892/2017)

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 03/04/2017.
Descrição: O presente projeto tem como foco a atividade antibiofilme e antitumoral de peptídeos de origem natural e de análogos peptidomiméticos, os últimos atendendo a demanda de estabilidade e escala necessárias para o efetivo desenvolvimento de fármacos. Associam-se grupos brasileiros com experiência na caracterização e atividade biológica de peptídeos naturais com grupos franceses que atuam na síntese de análogos peptidomiméticos..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
2014 - 2015
"New molecules & New targets: Innovative strategies for antimicrobial development" - call from Danish Ministry of Higher Education and Science's International Network Programme (Grant no. 4070-00042B)

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 07/06/2016.
Descrição: O objetivo desta proposta é explorar novas estratégias para combater infecções bacterianas. Para tanto, reunirá uma equipe interdisciplinar de dois grupos de pesquisa dinamarqueses e dois brasileiros, cada um contribuindo com áreas específicas de excelência acadêmica dentro da microbiologia básica e clínica, compostas de estudos de química natural e de infecção. Esta equipa e a sua experiência combinada formam uma forte plataforma para a identificação futura e caracterização de novos antibacterianos. Como o contato internacional entre os grupos de pesquisa até agora tem sido limitado por e-mail, o objetivo imediato desta aplicação é para explorar nossas possibilidades específicas e concretas para pesquisa bilateral futura. Iremos nos encontrar em duas ocasiões, uma vez no Brasil e uma vez na Dinamarca, com o duplo objetivo de: i) familiarizar a todos com a amplitude e o alcance dos trabalhos em curso em cada grupo através de um workshop de dois dias (na Dinamarca), e ii) nas duas universidades brasileiras, apresentando os pesquisadores dinamarqueses aos cientistas e as instalações dos laboratórios. Estas visitas permitirão continuar a construir nossa rede DK-BR e definir uma plataforma comum para futura colaboração e financiamento. Quando bem sucedida a criação de uma ou mais colaborações de pesquisa, os objetivos a longo prazo serão: i) a nível acadêmico para obter novas perspectivas sobre a interação entre os patógenos e hospedeiros; ii) a nível tecnológico para desenvolver novos ensaios sensíveis para triagem de antimicrobianos e o uso destes ensaios no rastreamento de compostos líderes, e; iii) a nível industrial / comercial para gerar novas entidades químicas capazes de combater infecções bacterianas..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
2014 - Atual
"Modelo experimental in vivo de Galleria mellonella: estudo de compostos fenólicos como agentes atenuadores da virulência bacteriana e determinação da relação estrutura-atividade-toxicidade" - MCTI/CNPq Nº 14/2014 - processo n° 443150/2014-1
Descrição: As abordagens tradicionais para combater as infecções bacterianas baseiam-se na interrupção do crescimento do micro-organismo. Embora essas estratégias sejam ainda eficazes, bactérias multirresistentes aos antimicrobianos convencionais representam um importante problema de saúde pública, sendo que o número de mortes causadas por infecções equivale a aproximadamente 20% de todas as fatalidades mundiais. Como agravante, 80% das espécies microbianas são capazes de se aderir em superfícies e formar agregados bacterianos envolvidos por uma matriz exopolissacarídica, conhecidos como biofilmes, o qual confere maior resistência à ação do sistema imune e aos agentes antimicrobianos. Estratégias baseadas na inibição da virulência bacteriana, chamadas terapias antivirulência, estão sendo investigadas, pois, potencialmente, devem gerar uma pressão evolutiva mais suave para o desenvolvimento de resistência quando comparadas com aquelas que atuam inibindo o crescimento bacteriano. Cabe destacar que não existe no mercado e tão pouco em fase clínica adiantada terapia cujo alvo seja inibição de fatores de virulência bacteriano e, que a indústria farmacêutica não apresenta há pelo menos duas décadas fármacos antibacterianos com mecanismo de ação diferente dos já disponíveis no mercado. Recentemente identificamos compostos fenólicos purificados de plantas medicinais capazes de prevenir a formação de biofilmes, assim, este projeto pretende avaliar compostos fenólicos de origem natural e sintética a fim determinar in vivo a relação entre a estrutura química, a atividade biológica e a toxicidade dos mesmos. Salienta-se a relevância do projeto no que diz respeito à utilização das larvas de Galleria mellonella como modelo experimental, com grande vantagem sobre os demais, destacando-se que: (i) G. mellonella é um invertebrado e não está sujeita à limitação ética; (ii) os estudos podem ser conduzidos a 37°C, mimetizando a temperatura corporal humana e (iii) a infecção de larvas apresenta correlação positiva com estudos de infecção em mamíferos. Ressalta-se que o uso desse hospedeiro experimental para estudo de compostos bioativos será inédito no estado do Rio Grande do Sul, contribuindo com a tendência mundial no uso de modelos invertebrados. Uma vez implementado o modelo, o número de parcerias com diversas áreas de conhecimento poderá ser ampliado, colaborando com avanço científico do país, bem como com o desenvolvimento de novas terapias com impacto direto no sistema de saúde público..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Mestrado acadêmico: (2) Doutorado: (1) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Coordenador / ALEXANDRE JOSÉ MACEDO - Integrante / Grace Gosmann - Integrante / Laura Nunes Silva - Integrante / Muriel Primon Barros - Integrante / Daniele Marin - Integrante.Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Auxílio financeiro.
2013 - 2016
FAPERGS- PqG - "Superfícies anti-infectivas para dispositivos médicos: estudo da atividade antibiofilme, capacidade de revestimento de superfícies de biomateriais, biocompatibilidade e vias de ação de análogos sintéticos de produtos naturais bioativos"

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 06/03/2016.
Descrição: A etiologia das infecções associadas a biofilmes em dispositivos médicos é complexa e pode ser influenciada por uma série de variáveis, como o formato e tipo de material de fabricação do dispositivo, a região anatômica em que este está localizado e episódios de surtos hospitalares concomitante com cirurgias. Ademais, biofilmes muitas vezes são multiespécies, os quais formam uma comunidade estruturada capaz de um comportamento coordenado e coletivo, onde as interações intercelulares e a comunicação (quorum-sensing) são essenciais para a sobrevivência. Neste contexto, fica clara a necessidade por novos agentes antiformação de biofilme. Em nossos estudos uma preferência é dedicada aos compostos que inibem biofilme por uma via alternativa, sem interferir no crescimento bacteriano (sem ação antibacteriana), face aos vários mecanismos de resistência já relatados. Os análogos sintéticos de moléculas de origem natural, podem apresentar um potencial promissor, já que existem relatos na literatura da atividade antibacteriana de outros compostos que possuem os mesmos grupos funcionais. Essa abordagem permite a obtenção mais rápida dos resultados com os compostos, sem a necessidade do isolamento do mesmo de uma planta, por exemplo. Outro aspecto importante é o desenvolvimento de superfícies biofuncionalizadas, as quais previnam a adesão bacteriana e o desenvolvimento do biofilme e ao mesmo tempo sejam biocompatíveis com as células mamíferas ? cuja busca é incessante na comunidade científica. O presente projeto visa avaliar a atividade antibiofilme contra bactérias patogênicas, a capacidade de revestimento de superfícies de biomateriais, a biocompatibilidade, bem como as vias de ação de análogos sintéticos de produtos naturais bioativos..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
2013 - 2016
Universal CNPq 2013 Superfícies anti-infectivas para dispositivos médicos: estudo da atividade antibiofilme, capacidade de revestimento de superfícies de biomateriais, biocompatibilidade e vias de ação de análogos sintéticos de produtos naturais bioativos

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 06/03/2016.
Descrição: A presente proposta visa modificar superfícies de dispositivos médicos que apresentam altos índices de infecção com compostos bioativos, visando a diminuição da adesão de bactérias patogênicas. Aproximadamente 80% das infecções hospitalares estão relacionadas a microrganismos formadores de biofilme e constituem uma das principais causas no aumento dos custos e morbidade dentro de hospitais. Como linha de pesquisa, nosso grupo busca desde 2008 alternativas para combater a adesão e formação de biofilmes, principalmente prospectando moléculas ativas produzidas por plantas, micro-organismos e artrópodes, bem como realizando estudos de resistência a agentes antibacterianos por bactérias vivendo em biofilme. Com a experiência adquirida nosso grupo pretende iniciar a geração de superfícies anti-infectivas capazes de inibir a adesão de bactérias patogênicas, entender os possíveis mecanismos genéticos envolvidos na não-adesão bacteriana e avaliar a biocompatibilidade desses materiais com células mamíferas in vitro..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
2013 - Atual
"Estruturação de uma Rede de Pesquisa em Biotecnologia Marinha - MCTI/CNPq/FNDCT - Ação Transversal nº 63/2013 - processo n°408578/2013-0

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 06/03/2016.
Descrição: Nos últimos anos, os organismos marinhos tornaram-se os mais novos candidatos para a obtenção de novas moléculas com potencial terapêutico. Num contexto em que a biodiversidade vem sendo progressivamente dizimada e onde existem inúmeras doenças que carecem de um tratamento eficaz, o valor dos produtos naturais como fontes de medicamentos para a sociedade e para a economia é incalculável. Assim, a investigação de micro-organismos marinhos é extremamente atrativa uma vez que (i) os micro-organismos marinhos são reconhecidos como os produtores de diversos compostos isolados de organismos marinhos, (ii) são facilmente mantidos em laboratório, (iii) a produção de metabólitos é relativamente rápida e passível em larga escala; (iv) não se faz necessária a coleta periódica, acarretando baixo impacto na biodiversidade marinha e (v) a biodiversidade marinha da costa brasileira ainda é muito pouco conhecida. Além do importante fator econômico, deve-se ressaltar também o valor estratégico que representa, para qualquer nação, a independência na produção de medicamentos com matéria-prima e tecnologias derivadas do próprio país. Assim, a REDE MarAtivo propõe-se a unir esforços de três grupos de pesquisa, contemplando três Regiões do Brasil - Sul, Nordeste e Norte (RS, AL e RO) - integrando distintas experiências na busca por moléculas oriundas de micro-organismos marinhos que sejam bioativas. Em especial buscar-se-á compostos bioativos contra enfermidades de grande relevância clínica como: malária, tricomonose, câncer e infecções hospitalares..
Situação: Em andamento; Natureza: Pesquisa.
2009 - 2013
"Rede de Pesquisa e Formação em Biofuncionalização de Superfícies" - Programa de NANOBIOTECNOLOGIA EDITAL 04/CII-2008 - CAPES REDE NANOBIOTEC-BRASIL (n° 703/2009)

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 03/06/2016.
Descrição: O controle das propriedades de superfícies ocupa, indubitavelmente, uma posição de destaque na ciência moderna em virtude da influência determinante que as características físico-químicas de interfaces exercem na concepção e no desempenho de materiais inovadores. O controle dos mecanismos de interação entre materiais dissimilares, enquanto as propriedades de volume são preservadas, é um desafio científico e tecnológico com grande potencial em áreas estratégicas, tais como microeletrônica, energia, biotecnologia e biomateriais. Por exemplo, a alta capacidade de reconhecimento molecular específico de determinadas biomoléculas é muitas vezes contrabalanceada pela simultânea adsorção física não-específica sobre substratos sólidos. Novos materiais com interfaces seletivas em que as interações específicas sejam distintamente predominantes e moduláveis despertam, conseqüentemente, interesse para aplicações como catalisadores heterogêneos, conversores de energia, adesivos, sensores e biochips. Tendo em vista a espessura característica da região de superfície de um material (cerca de 10 nm), o estudo de superfícies é intrinsecamente domínio (e em grande parte precursor) da nanociência e nanotecnologia. A engenharia de superfícies consiste em desenvolver processos que confiram a um determinado material as propriedades de serviço desejadas através do controle das características de sua superfície. Modernamente, tem-se realizado esforços para compatibilizar materiais de baixo custo (ex.: polímeros sintéticos) ou com propriedades especiais (ex.: elevada resistência à fadiga, resposta a estímulos das vizinhanças) com meios nos quais sua aplicação direta é inviável. A biofuncionalização de superfícies aplica esses princípios a materiais e meios biológicos, tendo como objetivo o desenvolvimento de dispositivos biomédicos, biosensores e sistemas para biocatálise e vetorização de moléculas ativas (drug delivery). Dentre os objetivos desta rede, está: cita-se: formar profissionais em nível de pós-graduação com o perfil multidisciplinar desejável para atuação em biofuncionalização de superfícies, bem como funcionalizar e caracterizar superfícies e interfaces nanoestruturadas utilizando moléculas bioativas e nanopartículas, tendo em vista aplicações como: combate à formação de biofilmes em implantes médicos; combate à atividade microbiana; imobilização de biocatalisadores para síntese orgânica; biotransformação de moléculas com atividade biológica e o desenvolvimento de (bio)sensores..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
2009 - 2011
"Prospecção de novas moléculas oriundas da biodiversidade brasileira com atividade anti-biofilmes patogênicos e anti-parasitária" - Edital MCT/CNPq Nº 14/2009 Universal (processo n° 474834/2009-3)

Projeto certificado pelo(a) coordenador(a) Alexandre José Macedo em 03/06/2016.
Descrição: A proposta deste projeto consiste em prospectar novas moléculas oriundas de diversas fontes da biodiversidade brasileira (bactérias e fungos da coleção do laboratório, carrapato bovino Riphicephalus (Boophilus) microplus e plantas endêmicas coletadas na Caatinga) capazes de evitar a formação de biofilmes microbianos patogênicos e combater parasitos de importância médica..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Graduação: (3) / Mestrado acadêmico: (2) / Doutorado: (2) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Integrante / ALEXANDRE JOSÉ MACEDO - Coordenador / Karine Rigon Zimmer - Integrante / Márcia Vanusa da Silva - Integrante / Tiana Tasca - Integrante / Mariana Duarte - Integrante / Marina Scopel - Integrante.
2008 - 2010
"Modulação de biofilmes bacterianos por compostos produzidos por bactérias associadas a esponjas marinhas" - Edital MCT/CNPq 62/2008 Jovens Pesquisadores (processo n° 576774/2008-1)
Descrição: Um grande número de compostos biologicamente ativos tem sido isolado de esponjas marinhas e de seus microorganismos associados. A busca de princípios ativos de microorganismos é uma das áreas em que mais se investe nos países desenvolvidos, principalmente nas pesquisas de bioprospecção realizadas pelas indústrias farmacêuticas. As esponjas são os maiores produtores marinhos de novos metabólitos, com mais de 200 metabólitos sendo descritos a cada ano. Diversos compostos que interferem com o quorum sensing bacteriano estão sendo encontrados no ambiente marinho. As bactérias utilizam o quorum sensing para regular uma variedade de fenótipos, tais como a formação de biofilmes, a produção de toxinas, produção de exopolissacarídeos, produção de fatores de virulência e motilidade, os quais são essenciais para o sucesso do estabelecimento de uma relação entre um simbionte ou patógeno com seu hospedeiro. O sistema quorum sensing demonstra-se também envolvido com a tolerância dos biofilmes aos compostos antimicrobianos. Desta maneira, este projeto visa buscar compostos biologicamente ativos capazes de combater biofilmes bacterianos patogênicos, a partir de bactérias associadas a esponjas marinhas da costa sul do Brasil..
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Mestrado acadêmico: (1) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Integrante / ALEXANDRE JOSÉ MACEDO - Coordenador / Carlos Termignoni - Integrante / Karine Rigon Zimmer - Integrante / Marina Scopel - Integrante / Danielle Campiol Arruda - Integrante / Lucas André Dedavid e Silva - Integrante / Adriana Seixas - Integrante.Financiador(es): Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico - Bolsa.
2004 - 2007
"Ectonucleotidaes e nucleotidases solúveis: avaliação das atividades em condições fisiológicas e patológicas".
Descrição: Caracterização de uma enzima ectonucleotidase-pirofosfatase em plaquetas de rato adultas e modulação do sistema purinérgico em ratos hipertensos.
Situação: Concluído; Natureza: Pesquisa.
Alunos envolvidos: Graduação: (1) / Doutorado: (1) .
Integrantes: Danielle da Silva Trentin - Integrante / Cristina Ribas Furstenau - Integrante / Maria Luiza Morais BarretoChaves - Integrante / João José Freitas Sarkis - Coordenador.


Revisor de periódico


2013 - Atual
Periódico: Brazilian Journal of Microbiology (Impresso)
2013 - Atual
Periódico: Scientia Prima - Associação Brasileira de Incentivo à Ciência
2013 - Atual
Periódico: BMC Complementary and Alternative Medicine (Online)
2013 - Atual
Periódico: BioMed Research International
2013 - Atual
Periódico: Journal of Medicinal Plant Research
2014 - Atual
Periódico: African Journal of Microbiology Research
2014 - Atual
Periódico: Revista Liberato (Novo Hamburgo)
2015 - Atual
Periódico: Anais da Academia Brasileira de Ciências (Online)
2015 - Atual
Periódico: African Journal of Biotechnology
2015 - Atual
Periódico: Frontiers in Microbiology (Online)
2016 - Atual
Periódico: Journal of Agricultural and Food Chemistry
2018 - Atual
Periódico: INDUSTRIAL CROPS AND PRODUCTS


Áreas de atuação


1.
Grande área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia.
2.
Grande área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: ANÁLISES CLÍNICAS/Especialidade: MICROBIOLOGIA.
3.
Grande área: Ciências da Saúde / Área: Farmácia / Subárea: ANÁLISES CLÍNICAS/Especialidade: Adesão bacteriana e formação de biofilmes.


Idiomas


Inglês
Compreende Bem, Fala Razoavelmente, Lê Bem, Escreve Bem.
Espanhol
Compreende Bem, Fala Pouco, Lê Razoavelmente, Escreve Pouco.


Prêmios e títulos


2018
Promoção da publicação FEMS Yeast Res. 2018 Nov 1;18(7) [doi: 10.1093/femsyr/foy082] no Virtual Special Issue (VSI) de artigos de autores latino-americanos, FEMS - Federation of European Microbiological Societies.
2017
Trabalho destaque e indicado ao Prêmio Jovem Pesquisador no XXIX SIC UFRGS - Apresentado por Rodrigo Campos da Silva, UFRGS.
2016
Trabalho premiado em 2º lugar na categoria Mini-conferências do VI Encontro Nacional de Moringa (ENAM2016) - Apresentado por Maiara Moura, Universidade Federal do Vale do São Francisco (UNIVASF).
2015
Vencedora do 1° Concurso Ciência por Imagens - Categoria Microscopia Confocal, Centro de Microscopia e Microanálise da UFRGS.
2015
Vencedora do 1° Concurso Ciência por Imagens - Categoria Microscopia Eletrônica de Varredura, Centro de Microscopia e Microanálise da UFRGS.
2014
Menção Honrosa no Prêmio Capes de Tese do Ano 2014 - Área Farmácia, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPES.
2013
Indicação de louvor na obtenção do título de doutor, Universidade Federal do Rio Grande do Sul.
2012
Melhor trabalho na área de Microbiologia Médica apresentado na forma de pôster durante o XXI Congresso Latino-americano de Microbiologia no período de 28/10 a 01/11 de 2012 em Santos-SP, Brasil, Associação Latino-americana de Microbiologia.
2012
Prêmio Elfrides Schapoval de Mérito Científico - Melhor comunicação oral do IV Encontro Anual do PPGCF, PPGCF - UFRGS.
2012
Selecionada no Edital Missão científica de curta duração no exterior para estudantes dos PPGs da UFRGS 01/2012 - Destino: Center for Biofilm Engineering - Montana State University - Bozeman/MT - EUA, Pró-Reitoria de Pós-Graduação - UFRGS.
2011
Destaque da sessão de pôsteres Química Medicinal e Produtos Naturais no III Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas da UFRGS, Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas da UFRGS.
2009
Destaque da sessão de pôsteres Biotecnologia e Análises Clinicas no I Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas da UFRGS, Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas da UFRGS.
2008
Destaque na sessão Biotecnologia do XX Salão de Iniciação Científica, UFRGS.


Produções



Produção bibliográfica
Citações

Web of Science
Total de trabalhos:26
Total de citações:269
Fator H:9
Trentin, D.  Data: 26/06/2018

SCOPUS
Total de trabalhos:17
Total de citações:302
Trentin, D.S.  Data: 26/06/2018

Artigos completos publicados em periódicos

1.
3SILVA, P.2018SILVA, P. ; MOURA, M. C. ; GOMES, F. ; TRENTIN, D.S. ; OLIVEIRA, A. P. ; MELLO, G. ; PITTA, M. ; REGO, M. ; COELHO, L. ; MACEDO, A. J. ; FIGUEIREDO, R. ; PAIVA, P. M. G. ; NAPOLEAO, T. H. . PgTeL, the lectin found in Punica granatum juice, is an antifungal agent against Candida albicans and Candida krusei. INTERNATIONAL JOURNAL OF BIOLOGICAL MACROMOLECULES, v. 108, p. 391-400, 2018.

2.
2DE OLIVEIRA DEMBOGURSKI, DJACELI SAMPAIO2018DE OLIVEIRA DEMBOGURSKI, DJACELI SAMPAIO ; DA SILVA TRENTIN, DANIELLE ; BOARETTO, AMANDA GALDI ; RIGO, GRAZIELA VARGAS ; DA SILVA, RODRIGO CAMPOS ; Tasca, Tiana ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ ; CAROLLO, CARLOS ALEXANDRE ; SILVA, DENISE BRENTAN . Brown propolis-metabolomic innovative approach to determine compounds capable of killing Staphylococcus aureus biofilm and Trichomonas vaginalis. FOOD RESEARCH INTERNATIONAL, v. 111, p. 661-673, 2018.

3.
1SILVA, LAURA N2018SILVA, LAURA N ; CAMPOS-SILVA, RODRIGO ; RAMOS, LÍVIA S ; TRENTIN, DANIELLE S ; MACEDO, ALEXANDRE J ; BRANQUINHA, MARTA H ; SANTOS, ANDRÉ L S . Virulence of Candida haemulonii complex in Galleria mellonella and efficacy of classical antifungal drugs: a comparative study with other clinically relevant non-albicans Candida species. FEMS YEAST RESEARCH (ONLINE), v. 18, p. 1-12, 2018.

4.
4SILVA, L. N.2017 SILVA, L. N. ; HORA, G. C. ; SOARES, T. A. ; BOJER, M. S. ; INGMER, H. ; MACEDO, A. J. ; TRENTIN, D.S. . Myricetin protects Galleria mellonella against Staphylococcus aureus infection and inhibits multiple virulence factors. Scientific Reports, v. 7, p. 1-16, 2017.

5.
5MOURA, M. C.2017MOURA, M. C. ; TRENTIN, D.S. ; NAPOLEAO, T. H. ; BARROS, M. P. ; XAVIER, A. ; CARNEIRO, N. ; PAIVA, P. M. G. ; MACEDO, A. J. ; COELHO, L. . Multi-effect of the water-soluble Moringa oleifera lectin against Serratia marcescens and Bacillus sp.: antibacterial, antibiofilm and anti-adhesive properties. JOURNAL OF APPLIED MICROBIOLOGY, v. 123, p. 861-874, 2017.

6.
7RIGO, G. V.2017RIGO, G. V. ; TREIN, M. R. ; TRENTIN, D.S. ; MACEDO, A. J. ; GIORDANI, R. B. ; ALMEIDA, M. ; Tasca, T. . Diamine derivative anti- Trichomonas vaginalis and anti- Tritrichomonas foetus activities by effect on polyamine metabolism. BIOMEDICINE & PHARMACOTHERAPY, v. 95, p. 847-855, 2017.

7.
6MENEZES, CAMILA BRAZ2017MENEZES, CAMILA BRAZ ; RIGO, GRAZIELA VARGAS ; BRIDI, HENRIQUE ; Trentin, Danielle Da Silva ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ ; VON POSER, GILSANE LINO ; Tasca, Tiana . The anti- Trichomonas vaginalis phloroglucinol derivative isoaustrobrasilol B modulates extracellular nucleotide hydrolysis. Chemical Biology & Drug Design, v. 90, p. 811-819, 2017.

8.
8SILVA, L. N.2016 SILVA, L. N. ; ZIMMER, K. R. ; MACEDO, A. J. ; TRENTIN, D.S. . Plant Natural Products Targeting Bacterial Virulence Factors. Chemical Reviews, v. 116, p. 9162-9236, 2016.

9.
9MORELO, N.2016MORELO, N. ; TRENTIN, D.S. . Galleria mellonella: um hospedeiro experimental alternativo para estudos de infecções por bactérias gram-positivas. Revista Liberato (Novo Hamburgo), v. 17, p. 99-131, 2016.

10.
10TRENTIN, D.S.2015 TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; FRASSON, A. P. ; RZHEPISHEVSKA, O. ; SILVA, M. V. ; PULCINI, E. L. ; JAMES, G. ; SOARES, G. V. ; Tasca, T. ; RAMSTEDT, M. ; GIORDANI, R. B. ; LOPES, N. P. ; MACEDO, A. J. . Natural Green Coating Inhibits Adhesion of Clinically Important Bacteria. Scientific Reports, v. 5, p. 8287, 2015.

11.
11SILVA, LAURA NUNES2015SILVA, LAURA NUNES ; Trentin, Danielle Da Silva ; Zimmer, Karine Rigon ; TRETER, JANINE ; BRANDELLI, CLARA LIA COSTA ; Frasson, Amanda Piccoli ; Tasca, Tiana ; SILVA, ALEXANDRE GOMES DA ; SILVA, MÁRCIA VANUSA DA ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ . Anti-infective effects of Brazilian Caatinga plants against pathogenic bacterial biofilm formation. Pharmaceutical Biology, v. 53, p. 464-468, 2015.

12.
15TRENTIN, D.S.2014TRENTIN, D.S.; Bonatto, F. ; ZIMMER, K. R. ; RIBEIRO, V. B. ; ANTUNES, A. L. S. ; BARTH, A. L. ; SOARES, G. V. ; Krug, C. ; BAUMVOL, I. J. R. ; MACEDO, A. J. . N2/H2 plasma surface modifications of polystyrene inhibit the adhesion of multidrug resistant bacteria. SURFACE & COATINGS TECHNOLOGY, v. 245, p. 84-91, 2014.

13.
14TRENTIN, D.S.2014TRENTIN, D.S.; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Medicinal plants from brazilian Caatinga: antibiofilm and antibacterial activities against Pseudomonas aeruginosa. Revista Caatinga (UFERSA. Impresso), v. 27, p. 265-271, 2014.

14.
13SESTO CABRAL, M. E.2014SESTO CABRAL, M. E. ; RAMOS, A. N. ; MACEDO, A. J. ; TRENTIN, D.S. ; TRETER, J. ; MANZO, R. H. ; VALDEZ, J. C. . Formulation and quality control of semi-solid containing harmless bacteria by-products: chronic wounds pro-healing activity. Pharmaceutical Development and Technology (Print), v. 20, p. 1-8, 2014.

15.
12TRENTIN, D.S.2014TRENTIN, D.S.; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Biofilmes bacterianos patogênicos: aspectos gerais, importância clínica e estratégias de combate. Revista Liberato (Novo Hamburgo), v. 14, p. 213-236, 2014.

16.
16TRENTIN, D.S.2013 TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; Amaral, M.W. ; Zimmer, K.R. ; SILVA, M. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Tannins possessing bacteriostatic effect impair Pseudomonas aeruginosa adhesion and biofilm formation. Plos One, v. 8, p. e66257, 2013.

17.
17Saito, Samuel Takashi2012Saito, Samuel Takashi ; Trentin, Danielle Da Silva ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ ; Pungartnik, Cristina ; Gosmann, Grace ; Silveira, Jaqueline de Deos ; Guecheva, Temenouga Nikolova ; Henriques, João Antonio Pêgas ; Brendel, Martin . Bioguided Fractionation Shows Cassia alata Extract to Inhibit Staphylococcus epidermidis and Pseudomonas aeruginosa Growth and Biofilm Formation. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine (Print), v. 2012, p. 1-13, 2012.

18.
18Frasson, A.P.2012Frasson, A.P. ; Santos, O. ; Duarte, M. ; Trentin, D.S ; GIORDANI, R. B. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; Tasca, T. ; MACEDO, A. J. . First report of anti-Trichomonas vaginalis activity of the medicinal plant Polygala decumbens from the Brazilian semi-arid region, Caatinga. Parasitology Research (1987. Print), v. 110, p. 2581-2587, 2012.

19.
19Trentin, D.S2011Trentin, D.S; Gorziza, D. F ; Abraham, W.R ; Antunes, A.L.S ; Lerner, C ; Mothes, B ; Termignoni, C ; Macedo, A.J . Antibiofilm activity of Cobetia marina filtrate upon Staphylococcus epidermidis catheter-related isolates. Brazilian Journal of Microbiology (Impresso), v. 42, p. 1329-1333, 2011.

20.
20Trentin, Danielle Da Silva2011 Trentin, Danielle Da Silva; Giordani, Raquel Brandt ; Zimmer, Karine Rigon ; da Silva, Alexandre Gomes ; da Silva, Márcia Vanusa ; Correia, Maria Tereza dos Santos ; Baumvol, Israel Jacob Rabin ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ . Potential of medicinal plants from the Brazilian semi-arid region (Caatinga) against Staphylococcus epidermidis planktonic and biofilm lifestyles. Journal of Ethnopharmacology, v. 137, p. 327-335, 2011.

21.
22FURSTENAU, Cristina Ribas2010FURSTENAU, Cristina Ribas ; RAMOS, D.B. ; Vuaden, F.C. ; Casali, E.A. ; Monteiro, P.S. ; TRENTIN, D.S. ; Gossenheimer, A.N. ; Bogo, M.R. ; Bonan, C.D. ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; Sarkis, J.J.F. ; Wofchuk, S.T. . L-NAME-treatment alters ectonucleotidase activities in kidney membranes of rats.. Life Sciences (1973), v. 87, p. 325-332, 2010.

22.
21ANTUNES, ANA LÚCIA SOUZA2010ANTUNES, ANA LÚCIA SOUZA ; TRENTIN, DANIELLE SILVA ; BONFANTI, JÉSSICA WEIS ; PINTO, CAMILLE CATTANI FERREIRA ; PEREZ, LEANDRO REUS RODRIGUES ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ ; BARTH, AFONSO LUIS . Application of a feasible method for determination of biofilm antimicrobial susceptibility in staphylococci. APMIS. Acta Pathologica, Microbiologica et Immunologica Scandinavica., v. 118, p. 873-877, 2010.

23.
23ZIMMER, K. R.2009ZIMMER, K. R. ; Borré, G.L. ; TRENTIN, D.S. ; Júnior, C.W. ; FRASSON, A. P. ; Graeff, A.A. ; Gomes, P. ; MACEDO, A. J. . Enzimas microbianas de uso terapêutico e diagnóstico clínico. Revista Liberato (Novo Hamburgo), v. 3, p. 123-137, 2009.

24.
24FURSTENAU, C2008FURSTENAU, C ; TRENTIN, D ; GOSSENHEIMER, A ; RAMOS, D ; CASALI, E ; BARRETOCHAVES, M ; SARKIS, J . Ectonucleotidase activities are altered in serum and platelets of l-NAME-treated rats. Blood Cells, Molecules & Diseases (Print), v. 41, p. 223-229, 2008.

25.
25FURSTENAU, Cristina Ribas2007FURSTENAU, Cristina Ribas ; TRENTIN, D.S. ; BARRETOCHAVES, Maria Luiza Morais ; SARKIS, João José Freitas . The effects of angiotensin II and genetic hypertension upon extracellular nucleotide hydrolysis by rat platelet ectoenzymes. Thrombosis Research, v. 120, p. 877-884, 2007.

26.
26Fürstenau, Cristina Ribas2006Fürstenau, Cristina Ribas ; Trentin, Danielle Da Silva ; Barreto-Chaves, Maria Luiza Morais ; SARKIS, João José Freitas . Ecto-nucleotide pyrophosphatase/phosphodiesterase as part of a multiple system for nucleotide hydrolysis by platelets from rats: Kinetic characterization and biochemical properties. Platelets (Edinburgh. Print), Grã Bretanha, v. 17, n.2, p. 84-91, 2006.

Resumos expandidos publicados em anais de congressos
1.
PRUSKI, B. B. ; GARCIA, M. O. ; CUNHA, K. F. ; TRENTIN, D.S. ; MOREIRA, C. ; HARTWIG, D. D. . Avaliação da capacidade de formação de biofilme em isolados clínicos de Acinetobacter baumannii. In: XXIV Congresso de Iniciação Cinetífica da UFPel, 2015, Pelotas. XXIV Congresso de Iniciação Cinetífica da UFPel - Ciências da Saúde, 2015.

2.
GARCIA, M. O. ; PRUSKI, B. B. ; TRENTIN, D.S. ; ALVES, D. ; SCHUMACHER, R. F. ; HARTWIG, D. D. . Avaliação da atividade antibacteriana de compostos químicos da classe Seleniltriazóis e Selenilquinolinas contra Pseudomonas aeruginosa. In: XVII Encontro de Pós-Graduação UFPel (ENPOS), 2015, Pelotas. XVII Encontro de Pós-Graduação UFPel (ENPOS), 2015.

3.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; ZIMMER, K. R. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; SILVA, M. V. ; SOARES, G. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Caatinga plants as source of compounds against bacterial biofilms: Screening, purification and surface coating. In: IV Encontro Anual do Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas - UFRGS, 2012, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2012.

Resumos publicados em anais de congressos
1.
DEMBOGURSKI, D. S. O. ; TRENTIN, D.S. ; BOARETTO, AMANDA GALDI ; RIGO, G. V. ; CAMPOS-SILVA, RODRIGO ; Tasca, T. ; MACEDO, A. J. ; CAROLLO, C. A. ; SILVA, D. B. . Brown propolis compounds able killing Staphylococcus aureus biofilm and Trichomonas vaginalis. In: IV Congresso da Associação Brasileira de Ciências Farmacêuticas - ABCF, 2018, São Paulo. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. São Paulo: Faculdade de Ciências Farmacêuticas, USP, 2018. v. 54. p. 1-202.

2.
SILVA, L. N. ; HORA, G. C. ; SOARES, T. A. ; BOJER, M. S. ; INGMER, H. ; MACEDO, A. J. ; TRENTIN, D.S. . Myricetin protects Galleria mellonella against Staphylococcus aureus infection and inhibits multiple virulence factors. In: 29° Congresso Brasileiro de Microbiologia, 2017, Foz do Iguaçu. Livro de Resumos - 29° CBM, 2017.

3.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; MACEDO, A. J. ; BRANQUINHA, M. ; SANTOS, A. L. . Virulence of Candida haemulonii complex in Galleria mellonella and efficacy of classical antifungal drugs: a comparative study with other clinically relevant non-albicans Candida species. In: 29° Congresso Brasileiro de Microbiologia, 2017, Foz do Iguaçu - Pr. Livro de Resumos do 29° CBM, 2017.

4.
GARCIA, M. O. ; PRUSKI, B. B. ; TRENTIN, D.S. ; NASCIMENTO, N. M. ; SCHUMACHER, R. F. ; HARTWIG, D. D. . Antibacterial activity evaluation of chemical compounds of the selenium-triazole and selenium-quinoline classes against Pseudomonas aeruginosa. In: 28° Congresso Brasileiro de Microbiologia, 2015, Florianópolis. Anais do 28° CBM, 2015. v. 1.

5.
PRUSKI, B. B. ; GARCIA, M. O. ; TRENTIN, D.S. ; SACRAMENTO, M. ; ALVES, D. ; HARTWIG, D. D. . The effect of selenium-triazole and selenium-quinoline compounds on the bacteria Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. In: 28° Congresso Brasileiro de Mirobiologia, 2015, Florianópolis. Anais do 28° CBM, 2015.

6.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; FRASSON, A. P. ; RZHEPISHEVSKA, O. ; SILVA, M. V. ; Tasca, T. ; RAMSTEDT, M. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Natural products-coated surface inhibits adhesion of pathogenic bacteria. In: XXI, 2014, Cartagena, Colômbia. Hechos Microbiológicos. Cartagena: Escuela de Microbiologia - Universidad de Antioquia, 2014. v. 5. p. 41-41.

7.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; TRETER, J. ; BRANDELLI, C. L. C. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Anti-infective effects of Brazilian Caatinga plants against pathogenic bacterial biofilm formation. In: XXII Congreso Latinoamericano de Microbiología y 4 Congreso Colombiano de Microbiología, 2014, Cartagena, Colômbia. Hechos Microbiológicos. Cartagena: Escuela de Microbiologia - Universidad de Antioquia, 2014. v. 5. p. 180-180.

8.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; ZIMMER, K. R. ; FRASSON, A. P. ; SILVA, M. V. ; SOARES, G. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Surface coated with plant natural products inhibits adhesion of pathogenic bacterium. In: XII Encontro da Sociedade Brasileira de Pesquisa em Materiais - SBPMat, 2013, Campos do Jordão - SP. Program Book, 2013. p. 100-100.

9.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; Amaral, M.W. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Tannins possessing bacteriostatic effect impair Pseudomonas aeruginosa adhesion and biofilm formation. In: 4° Brazilian Conference on Natural Products (4° BCNP), 2013, Natal - RN. Annals - CD de resumos, 2013.

10.
TRENTIN, D.S.; Bonatto, F. ; Zimmer, K.R. ; RIBEIRO, V. B. ; ANTUNES, A. L. S. ; BARTH, A. L. ; SOARES, G. V. ; Krug, C. ; Baumvol, I.J.R. ; MACEDO, A. J. . Plasma surface modification of polystyrene inhibits biofilm formation by multidrug resistant bacteria. In: XXI Congresso Latinoamericano de Microbiologia (XXI ALAM), 2012, Santos - SP. Programa e Resumos, 2012. p. 74-74.

11.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; TRETER, J. ; BRANDELLI, C. L. C. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Medicinal plants from Brazilian Caatinga: Antibiofilm activity, cytotoxicity evaluation and phytochemical screening. In: II International Conference on Antimicrobial Research, 2012, Lisboa. Book of abstracts, 2012.

12.
TRENTIN, D.S.; Amaral, M.W. ; GIORDANI, R. B. ; Zimmer, K.R. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Stem-bark extracts from Brazilian Caatinga plants prevent Pseudomonas aeruginosa biofilm formation through bacteriostatic properties. In: 26° Congresso Brasileiro de Microbiologia, 2011, Foz do Iguaçu - PR. Microbiologia in Foco, 2011. v. 16. p. 205-205.

13.
Trentin, Danielle Da Silva; Giordani, Raquel Brandt ; Zimmer, Karine Rigon ; da Silva, Alexandre Gomes ; da Silva, Márcia Vanusa ; Correia, Maria Tereza dos Santos ; Baumvol, Israel Jacob Rabin ; MACEDO, ALEXANDRE JOSÉ . Potential of medicinal plants from the Brazilian semi-arid region (Caatinga) against Staphylococcus epidermidis planktonic and biofilm lifestyles. In: 3° BCNP - Brazilian Conference on Natural Products, 2011, Ouro Preto- MG. Livro de Resumos. v. 1.

14.
GIORDANI, R. B. ; TRENTIN, D.S. ; Amaral, M.W. ; Zimmer, K.R. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Antibacterial activity of Brazilian Caatinga plants and its potential to avoid adherence and biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa. In: 3° BCNP - Brazilian Conference on Natural Products, 2011, Ouro Preto. Livro de Resumos, 2011. p. 94-94.

15.
TRENTIN, D.S.; Amaral, M.W. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Antibacterial and antiadhesive properties of stem-bark extracts from brazilian Caatinga plants against Pseudomonas aeruginosa. In: III Encontro Anual do Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas - UFRGS, 2011, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2011.

16.
TRENTIN, D.S.; Zimmer, K.R. ; Bonatto, F. ; Krug, C. ; SOARES, G. V. ; Rovani, S. ; SOARES, M. ; Tasca, T. ; MACEDO, A. J. ; Baumvol, I.J.R. . Plasma surface modification of polystyrene inhibits Staphylococcus epidermidis pathogenic biofilm formation. In: IX Encontro da Sociedade Brasileira de Pesquisa em Materiais, 2010, Ouro Preto - MG. Program Book e CD, 2010. p. 28-28.

17.
SOARES, G. V. ; Krug, C. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; Bonatto, F. ; CAMPO, L. ; Rovani, S. ; MACEDO, A. J. ; RODEMBUSCH, F. ; Baumvol, I.J.R. . N2/H2 plasma modification of polystyrene inhibits Staphylococcus epidermidis pathogenic biofilm formation. In: Twelfth International Conference on Plasma Surface Engineering, 2010, Garmish-Partenkirchen. Abstracts book, 2010. p. 111-111.

18.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; FRAGA, F. B. F. F. ; MACEDO, A. J. . Marine Bacterial Extract Against Pathogenic Biofilms. In: XXXVIII Annual Meeting of Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology (SBBq), 2009, Águas de Lindóia-SP. Program and Index, 2009. p. 64-64.

19.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; ANTUNES, A. L. S. ; ABRAHAM, W. ; MACEDO, A. J. . Bactéria marinha produz metabólito capaz de impedir a formação de biofilme de Staphylococcus epidermidis. In: 25° Congresso Brasileiro de Microbiologia, 2009, Porto de Galinhas - PE. Microbiologia in Foco, 2009. v. 9.

20.
TRENTIN, D.S.; Gorziza, D. F ; ANTUNES, A. L. S. ; ABRAHAM, W. ; Macedo, A.J . Atividade antibiofilme de extrato bacteriano marinho frente a Staphylococcus epidermidis de cateter venoso central. In: VIII Encontro de Controle de Infecção e V Encontro Gaúcho de Microbiologia Aplicada ao Controle de Infecção, 2009, Gramado RS. Livro de Resumos, 2009.

21.
ANTUNES, A. L. S. ; BONFANTI, J. W. ; PINTO, C. C. F. ; TRENTIN, D.S. ; PEREZ, L. R. R. ; LAZZAROTTO, C. ; FREITAS, A. L. P. ; MACEDO, A. J. ; BARTH, A. L. . Perfil de suscetibilidade a vancomicina entre isolados de Staphylococcus epidermidis com crescimento planctônico e em biofilme. In: VIII Encontro de Controle de Infecção e V Encontro Gaúcho de Microbiologia Aplicada ao Controle de Infecção, 2009, Gramado - RS. CD de Resumos, 2009.

22.
GORZIZA, D. F. ; TRENTIN, D.S. ; ANTUNES, A. L. S. ; MACEDO, A. J. . Estudo da atividade antibiofilme de extratos de bactéria isolada de ambiente marinho. In: XXI Salão de Iniciação Científica UFRGS, 2009, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2009.

23.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; ABRAHAM, W. ; ANTUNES, A. L. S. ; Lerner, C. ; Mothes, B. ; Termignoni, C. ; MACEDO, A. J. . Marine bacterium metabolites inhibit biofilm formation of Staphylococcus epidermidis strains susceptible to specific antibiotics. In: I Encontro Anual do Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas - UFRGS, 2009, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2009.

24.
ANTUNES, A. L. S. ; LAZZAROTTO, C. ; PINTO, C. C. F. ; TRENTIN, D.S. ; REITER, K. C. ; FREITAS, A. L. P. ; MACEDO, A. J. ; BARTH, A. L. . Formação de biofilme e suscetibilidade aos antimicrobianos em amostras de Staphylococcus spp. isoladas de cateter venoso central. In: 1° Simpósio Internacional em Microbiologia em Clínica, 2008, Gramado-RS. Anais, 2008.

25.
TRENTIN, D.S.; FRAGA, F. B. F. F. ; MACEDO, A. J. . Atividade de extratos bacterianos marinhos frente a biofilmes patogênicos. In: 1° Simpósio Internacional em Microbiologia em Clínica, 2008, Gramado -RS. Livro de Resumos, 2008.

26.
FRAGA, F. B. F. F. ; TRENTIN, D.S. ; MACEDO, A. J. . Atividade anti-biofilme de metabólitos produzidos por bactérias isoladas de esponjas marinhas. In: XX Salão de Iniciação Científica UFRGS, 2008, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2008.

27.
FURSTENAU, Cristina Ribas ; TRENTIN, D.S. ; RAMOS, D.B. ; Casali, E.A. ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . Ectonucleotidase activities are altered in blood serum and platelets of L-Name-trated rats. In: XXXXVI Annual Meeting of the Brazilian Society for Biochemistry an Molecular Biology (SBBq) and 10th International Union of Biochemistry and Molecular Biology (IUBMB), 2007, Salvador. Livro de Resumos, 2007.

28.
TRENTIN, D.S.; FREITAS, A. L. P. ; ANTUNES, A. L. S. . Conjuntivites Bacterianas: Avaliação Laboratorial e Aconselhamento de Pacientes. In: 8 Salão de Extensão da Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 2007, Porto Alegre - RS. Livro e CD de Resumos, 2007. p. 32.

29.
Gossenheimer, A.N. ; FURSTENAU, C ; TRENTIN, D.S. ; RAMOS, D.B. ; Casali, E.A. ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; Sarkis, J.J.F. . As atividades ectonucleotidases são alteradas em soro sanguíneo e em plaquetas de ratos tratados com L-name. In: XIX Salão de Iniciação Cinetífica, 2007, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2007.

30.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, C ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; Sarkis, J.J.F. . Angiotensina II e Hipertensão Genética Alteram as Atividades das Enzimas que Degradam Nucleotídeos Extracalulares em Plaquetas de Ratos Adultos. In: XVIII Salão de Iniciação Científica - UFGRS, 2006, Porto Alegre - RS. CD de Resumos, 2006.

31.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, C ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; Sarkis, J.J.F. . Angiotensina II e Hipertensão Genética Alteram as Atividades das Enzimas que Degradam Nucleotídeos Extracalulares em Plaquetas de Ratos Adultos. In: X Salão de Iniciação Científica do Instituto de Cardiologia do Rio Grande do Sul, 2006, Porto Alegre. Anais do X SIC, 2006. p. 151-151.

32.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, Cristina Ribas ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . Efeito in vitro da angiotensina II sobre a hidrólise extracelular dos nucleotídeos ATP, ADP e AMP por plaquetas de ratos. In: XX Reunião Anual da Fesbe, 2005, Águas de Lindóia - SP. Livro de Resumos, 2005. p. 69-69.

33.
FURSTENAU, Cristina Ribas ; TRENTIN, D.S. ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . Caracterização de uma ecto-nucleotídeo pirofosfatase/fosfodiesterase (E-NPP) em plaquetas de ratos. In: XX Reunião Anual da Fesbe, 2005, Águas de Lindóia- SP. Livro de Resumos, 2005. p. 68-68.

34.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, C ; Sarkis, J.J.F. . Efeitos da angiotensina II sobre as atividades das enzimas que degradam nucleotídeos extracelulares em plaquetas de ratos. In: XVII Salão de Iniciação Científica, 2005, Porto Alegre. CD de resumos, 2005.

Artigos aceitos para publicação
1.
BOROWSKI, R. G. V. ; ZIMMER, K. R. ; LEONARDI, B. F. ; TRENTIN, D.S. ; CAMPOS, R. ; MACEDO, A. J. ; GNOATTO, S. ; Gosmann, G. ; ZIMMER, A. R. . Red pepper Capsicum baccatum: source of antiadhesive and antibiofilm compounds against nosocomial bacteria. INDUSTRIAL CROPS AND PRODUCTS, 2018.

Apresentações de Trabalho
1.
TRENTIN, D.S.. Modelos Alternativos de Experimentação Animal. 2018. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

2.
BRUST, F. ; BOFF, L. ; TRENTIN, D.S. ; ROZALES, F. P. ; BARTH, A. L. ; MACEDO, A. J. . SUBPOPULATIONS OF NDM-1 PRODUCING ENTEROBACTER HORMAECHEI CLINICAL ISOLATE SHOW DIFFERENCES IN ANTIMICROBIAL TREATMENT RESPONSE AND IN BIOFILM FORMATION. 2018. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

3.
TRENTIN, D.S.; GOETHEL, G. ; GAUER, B. . Métodos alternativos ao uso de animais. 2017. (Apresentação de Trabalho/Outra).

4.
TRENTIN, D.S.. Fatores de virulência como alvo para controle de infecções por Staphylococcus spp.: estudos in vitro e in vivo de compostos fenólicos de origem natural e sintética. 2017. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

5.
TRENTIN, D.S.. Galleria mellonella: hospedeiro alternativo para infecções microbianas. 2017. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

6.
TRENTIN, D.S.. Avaliação da virulência microbiana no hospedeiro alternativo de larvas de Galleria mellonella. 2017. (Apresentação de Trabalho/Outra).

7.
SILVA, L. N. ; HORA, G. C. ; SOARES, T. A. ; BOJER, M. S. ; INGMER, H. ; MACEDO, A. J. ; TRENTIN, D.S. . Myricetin as inhibitor of multiple virulence factors in Staphylococcus aureus. 2017. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

8.
CAMPOS, R. ; SENGER, F. R. ; LANDEL, M. ; MENEZES, C. B. ; RIGO, G. V. ; SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; MACEDO, A. J. ; Tasca, T. . Anti-Trichomonas vaginalis, antibiofilm and antimicrobial activities of bioactive metabolities produced by marine sponge-associated fungi. 2016. (Apresentação de Trabalho/Comunicação).

9.
MOURA, M. C. ; TRENTIN, D.S. ; NAPOLEAO, T. H. ; BARROS, M. P. ; PAIVA, P. M. G. ; MACEDO, A. J. . Lectina de Moringa oleifera (WSMoL): propriedade antibiofilme frente a Serratia marcescens e Bacillus sp.. 2016. (Apresentação de Trabalho/Comunicação).

10.
TRENTIN, D.S.. Myricetin protects Galleria mellonella from Staphylococcus aureus infection via inhibition of the several virulence factors. 2016. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

11.
TRENTIN, D.S.. Natural green coating inhibits adhesion of clinically important bacteria. 2015. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

12.
TRENTIN, D.S.. Antivirulence compound against Staphylococcus aureus. 2015. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

13.
TRENTIN, D.S.. Staphylococcus spp.: antivirulence and antimicrobial disrupting pre-formed biofilms compounds. 2015. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

14.
GARCIA, M. O. ; PRUSKI, B. B. ; TRENTIN, D.S. ; ALVES, D. ; SCHUMACHER, R. F. ; HARTWIG, D. D. . Avaliação da atividade antibacteriana de compostos químicos da classe seleniltriazóis e selenilquinolinas contra Pseudomonas aeruginosa. 2015. (Apresentação de Trabalho/Outra).

15.
PRUSKI, B. B. ; GARCIA, M. O. ; CUNHA, K. F. ; TRENTIN, D.S. ; MOREIRA, C. ; HARTWIG, D. D. . Avaliação da capacidade de formação de biofilme em isolados clínicos de Acinetobacter baumannii. 2015. (Apresentação de Trabalho/Outra).

16.
PRUSKI, B. B. ; GARCIA, M. O. ; TRENTIN, D.S. ; SACRAMENTO, M. ; ALVES, D. ; HARTWIG, D. D. . The effect of selenium-triazole and selenium-quinoline compounds on the bacteria Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. 2015. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

17.
GARCIA, M. O. ; PRUSKI, B. B. ; TRENTIN, D.S. ; NASCIMENTO, N. M. ; SCHUMACHER, R. F. ; HARTWIG, D. D. . Antibacterial activity evaluation of chemical compounds of the selenium-triazole and selenium-quinoline classes against Pseudomonas aeruginosa. 2015. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

18.
TRENTIN, D.S.. Cultivo de células eucarióticas e ensaios de citotoxicidade. 2014. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

19.
TRENTIN, D.S.. Taninos como agentes de recobrimento de superfície: das plantas medicinais ao protótipo de superfície anti-infectiva. 2014. (Apresentação de Trabalho/Comunicação).

20.
TRENTIN, D.S.. Galleria mellonella: hospedeiro alternativo para estudo da patogenicidade bacteriana. 2014. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

21.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; FRASSON, A. P. ; RZHEPISHEVSKA, O. ; SILVA, M. V. ; Tasca, T. ; RAMSTEDT, M. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Natural products-coated surface inhibits adhesion of pathogenic bacteria. 2014. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

22.
TRENTIN, D.S.. Strategies to combat pathogenic bacterial adhesion and biofilm formation: phytochemical prospecting and surface modifications aiming biomedical use. 2014. (Apresentação de Trabalho/Comunicação).

23.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; TRETER, JANINE ; BRANDELLI, C. L. C. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Anti-infective effects of brazilian Caatinga plants against pathogenic bacterial biofilm formation. 2014. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

24.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; ZIMMER, K. R. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; SILVA, M. V. ; SOARES, G. V. ; Baumvol, I.J.R. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Surface coated with natural products inhibits adhesion by pathogenic bacterium. 2013. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

25.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; Amaral, M.W. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Tannins possessing bacteriostatic effect impair Pseudomonas aeruginosa adhesion and biofilm formation. 2013. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

26.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; TRETER, J. ; BRANDELLI, C. L. C. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Ethno-directed search for medicinal plants from brazilian Caatinga region against pathogenic bacterial biofilm formation. 2013. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

27.
TRENTIN, D.S.. Tannins: from Brazilian medicinal plants to antibiofilm and surface coating agents. 2013. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

28.
TRENTIN, D.S.; SILVA, D. B. ; ZIMMER, K. R. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; SILVA, M. V. ; SOARES, G. V. ; LOPES, N. P. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Caatinga plants as source of compounds against bacterial biofilms: Screening, purification and surface coating. 2012. (Apresentação de Trabalho/Outra).

29.
TRENTIN, D.S.. Do edital à bancada: minha breve experiência no Center for Biofilm Engineering - EUA. 2012. (Apresentação de Trabalho/Conferência ou palestra).

30.
TRENTIN, D.S.; Bonatto, F. ; ZIMMER, K. R. ; RIBEIRO, V. B. ; ANTUNES, A. L. S. ; BARTH, A. L. ; SOARES, G. V. ; Krug, C. ; BAUMVOL, I. J. R. ; MACEDO, A. J. . Plasma surface modification of polystyrene inhibits biofilm formation by multidrug resistant bacteria. 2012. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

31.
SILVA, L. N. ; TRENTIN, D.S. ; ZIMMER, K. R. ; TRETER, JANINE ; BRANDELLI, C. L. C. ; FRASSON, A. P. ; Tasca, T. ; GOMES-SILVA, A. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Medicinal plants form brazilian Caatinga: antibiofilm activity, cytotoxicity evaluation and phytochemical screening. 2012. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

32.
TRENTIN, D.S.; AMARAL, M. W. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; GIORDANI, R. B. ; MACEDO, A. J. . Antibacterial and antiadhesive properties of stem-bark extracts from brazilian Caatinga agaisnt Pseudomonas aeruginosa. 2011. (Apresentação de Trabalho/Outra).

33.
TRENTIN, D.S.; GIORDANI, R. B. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, A. G. ; SILVA, M. V. ; CORREIA, M. T. S ; BAUMVOL, I. J. R. ; MACEDO, A. J. . Potential of medicinal plants from the brazilian semi-arid region (Caatinga) against Staphylococcus epidermidis planktonic and biofilm lifestyles. 2011. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

34.
GIORDANI, R. B. ; TRENTIN, D.S. ; AMARAL, M. W. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, A. G. ; MACEDO, A. J. . Antibacterial activity of brazilian Caatimga plants and its potential to avoid adherence and biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa. 2011. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

35.
TRENTIN, D.S.; AMARAL, M. W. ; GIORDANI, R. B. ; ZIMMER, K. R. ; SILVA, M. V. ; MACEDO, A. J. . Stem-bark extracts from brazilian Caatinga plants prevent Pseudomonas aeruginosa biofilm formation through bacteriostatic properties. 2011. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

36.
TRENTIN, D.S.; Rovani, S. ; Bonatto, F. ; Krug, C. ; SOARES, G. V. ; Baumvol, I.J.R. ; MACEDO, A. J. . Plasma surface modification of polystyrene inhibts Staphylococcus epidermidis pathogenic biofilm formation. 2010. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

37.
Gorziza, D. F ; TRENTIN, D.S. ; ANTUNES, A. L. S. ; MACEDO, A. J. . Estudo da atividade antibiofilme de extratos de bactéria isolada de ambiente marinho. 2009. (Apresentação de Trabalho/Outra).

38.
TRENTIN, D.S.; ANTUNES, A. L. S. ; MACEDO, A. J. . Marine bacterium metabolities inhibit biofilm formation of Staphylococcus epidermidis strains susceptible to specific antibiotics. 2009. (Apresentação de Trabalho/Outra).

39.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; ANTUNES, A. L. S. ; ABRAHAM, W. ; MACEDO, A. J. . Atividade antibiofilme de extrato bacteriano marinho frente a Staphylococcus epidermidis de cateter venoso central. 2009. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

40.
ANTUNES, A. L. S. ; BONFANTI, J. W. ; PINTO, C. C. F. ; TRENTIN, D.S. ; PEREZ, L. R. R. ; LAZZAROTTO, C. ; FREITAS, A. L. P. ; MACEDO, A. J. ; BARTH, A. L. . Perfil de suscetibilidade a vancomicina entre isolados de Staphylococcus epidermidis com crescimento planctônico e em biofilme. 2009. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

41.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; ANTUNES, A. L. S. ; ABRAHAM, W. ; MACEDO, A. J. . Bactéria marinha produz metabólito capaz de impedir a formação de biofilme de Staphylococcus epidermidis. 2009. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

42.
TRENTIN, D.S.; GORZIZA, D. F. ; FRAGA, F. B. F. F. ; MACEDO, A. J. . Marine bacterial extract activity against pathogenic biofilms. 2009. (Apresentação de Trabalho/Congresso).

43.
FRAGA, F. B. F. F. ; TRENTIN, D.S. ; MACEDO, A. J. . Atividade anti-biofilme de metabólitos produzidos por bactérias isoladas de esponjas marinhas. 2008. (Apresentação de Trabalho/Outra).

44.
TRENTIN, D.S.; Fernando Bueno Ferreira Fonseca de Fraga ; MACEDO, A. J. . Atividade de extratos bacterianos marinhos frente a biofilmes patogênicos. 2008. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

45.
ANTUNES, A. L. S. ; LAZZAROTTO, C. ; PINTO, C. C. F. ; TRENTIN, D.S. ; REITER, K. C. ; FREITAS, A. L. P. ; MACEDO, A. J. ; BARTH, A. L. . Formação de biofilme e suscetibilidade aos antimicrobianos em amostras de Staphylococcus spp. isoladas de cateter venoso central. 2008. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

46.
Gossenheimer, A.N. ; FURSTENAU, Cristina Ribas ; TRENTIN, D.S. ; RAMOS, D.B. ; Casali, E.A. ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . As atividades ectonucleotidases são alteradas em soro sanguíneo e em plaquetas de ratos tratados com L-name. 2007. (Apresentação de Trabalho/Outra).

47.
FURSTENAU, C ; TRENTIN, D.S. ; Gossenheimer, A.N. ; RAMOS, D.B. ; Casali, E.A. ; Barreto-Chaves, Maria Luiza Morais ; Sarkis, J.J.F. . Atividades ectonucleotidases são alteradas em soro e plaquetas de ratos tratados com L-NAME. 2007. (Apresentação de Trabalho/Simpósio).

48.
TRENTIN, D.S.; ANTUNES, A. L. S. . Conjuntivite bacteriana: avaliação laboratorial e aconselhamento de pacientes. 2007. (Apresentação de Trabalho/Outra).

49.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, Cristina Ribas ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . Angiotensina II e hipertensão genética alteram as atividades ectonucleotidases em plaquetas de ratos adultos. 2006. (Apresentação de Trabalho/Outra).

50.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, Cristina Ribas ; BARRETOCHAVES, Maria Luiza Morais ; SARKIS, João José Freitas . Angiotensina II e hipertensão genética alteram as atividades ectonucleotidases em plaquetas de ratos adultos. 2006. (Apresentação de Trabalho/Outra).

51.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, Cristina Ribas ; CHAVES, Maria Luiza Barreto ; SARKIS, João José Freitas . Efeito da angiotensina II sobre as atividades das enzimas que degradam nucleotídeos extracelulares em plaquetas de ratos. 2005. (Apresentação de Trabalho/Outra).

52.
FURSTENAU, C ; TRENTIN, D.S. ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; Sarkis, J.J.F. . Ecto-nucleotídeo pirofosfatase/fosfodiesterase (E-NPP) como parte de um múltiplo sistema para hidrólise de nucleotídeos em plaquetas de ratos: Caracterização cinética e propriedades bioquímicas. 2005. (Apresentação de Trabalho/Outra).

53.
TRENTIN, D.S.; FURSTENAU, C. R. ; BARRETO-CHAVES, M. L. M. ; SARKIS, J. J. F. . Efeito in vitro da angiotensina II sobre a hidrólise extracelular de nucleotídeos ATP, ADP e AMP por plaquetas de ratos. 2005. (Apresentação de Trabalho/Congresso).


Produção técnica
Trabalhos técnicos
1.
TRENTIN, D.S.. Parecerista ad hoc de Projetos de Mestrado Acadêmico - PPGCF - UFRGS.. 2016.

2.
TRENTIN, D.S.. Parecerista ad hoc de Projetos de Mestrado Acadêmico - PPGCF - UFRGS. 2015.

3.
TRENTIN, D.S.. Revisora Científica da área de Microbiologia Clínica - VIII Simpósio Brasileiro de Microbiologia Aplicada. 2015.

4.
TRENTIN, D.S.. Revisora Científica - 4th Brazilian Conference on Natural Products - BCNP. 2013.

5.
TRENTIN, D.S.. Avaliadora de Projetos de Mestrado Acadêmico - PPGCF - UFRGS. 2013.

Entrevistas, mesas redondas, programas e comentários na mídia
1.
TRENTIN, D.S.; MACEDO, A. J. . Pesquisa: Biofilmes microbianos Objetivo: Quebrar a resistência das bactérias. 2017. (Programa de rádio ou TV/Entrevista).

2.
TRENTIN, D.S.; ANTUNES, A. L. S. ; Gossenheimer, A.N. ; BARRETO, F. . A importância da Pós-Graduação na minha vida profissional. 2013. (Programa de rádio ou TV/Mesa redonda).


Demais tipos de produção técnica

Produção artística/cultural
Outras produções artísticas/culturais
1.
TRENTIN, D.S.; TRETER, JANINE ; FRASSON, A. P. ; Duarte, M. ; SILVA, L. C. N. . Oficina: Da planta da Caatinga ao medicamento. 2010 (Teatro - Oficina).



Bancas



Participação em bancas de trabalhos de conclusão
Mestrado
1.
TRENTIN, D.S.; ARAÚJO, B.V.; ZIMMERMANN, E. S.. Participação em banca de Graziela de Araújo Lock. Avaliação por microdiálise das concentrações livres pulmonares intersticiais e brônquicas de ciprofloxacino em ratos Wistar sadios e infctados com diferentes cepas de Pseudomonas formadora de biofilme. 2018. Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

2.
TRENTIN, D.S.; ROMAO, P.; ZIMMER, A. R.. Participação em banca de Graziela de Vargas Rigo. Atividade anti-Trichomonas vaginalis de 1,10-fenantrolina-5,6-diona e seus derivados metálicos: efeitos no metabolismo oxidativo e indução de morte por apoptose-like. 2018. Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

3.
TRENTIN, D.S.; MOTTA, A. S.; SCHWAMBACH, J.. Participação em banca de Marcos Saldanha Corrêa. Determinação da atividade antibacteriana e inibição de biofilme pelo óleo de folhas secas de Eucalyptus staigeriana. 2017. Dissertação (Mestrado em Microbiologia Agrícola e do Ambiente) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

4.
TRENTIN, D.S.; ARAÚJO, B.V.; ZAVASCKI, A. P.. Participação em banca de Priscila Martini Bernardi. Avaliação por microdiálise da penetração pulmonar da tobramicina em modelo de pneumonia por microrganismo formador de biofilme. 2016. Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

5.
TRENTIN, D.S.; VAINSTEIN, M. H.; AMARAL, P. A.. Participação em banca de Rafael Gomes Von Borowski. Avaliação da atividade antibiofilme de Capsicum baccatum ver. pendulum (Solanaceae). 2015. Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

6.
TRENTIN, D.S.; FRAZZON, A. P. G.; BARTH, A. L.. Participação em banca de Jéssica Weis Bonfanti. Efeito de concentrações subinibitórias de vancomicina na formação de biofilme do Staphylococcus epidermidis ATCC 35984. 2015. Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

Teses de doutorado
1.
TRENTIN, D.S.; RODRIGUES, M.; FERREIRA, H.. Participação em banca de Vanessa de Abreu Barcellos. Monitoramento da ação antifúngica do composto plumieridina em Cryptococcus neoformans por bioimagem. 2018. Tese (Doutorado em Biologia Celular e Molecular) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

2.
TRENTIN, D.S.; SIQUEIRA, F. M.; COSTA, M.. Participação em banca de Letícia Muner Otton. Análise fenotípica e genotípica da presença de pili tipo IV e motilidade em espécies de Pseudomonas isoladas de efluente hospitalar. 2017. Tese (Doutorado em Microbiologia Agrícola e do Ambiente) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

Qualificações de Doutorado
1.
TRENTIN, D.S.; DIAS, C.A.G.; ARAÚJO, B.V.. Participação em banca de Bruna Gaelzer Silva Torres. Desenvolvimento de modelo farmacocinético/ farmacodinâmico (PK/PD) para antimicrobiano frente à bactéria formadora de biofilme. 2015. Exame de qualificação (Doutorando em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

Qualificações de Mestrado
1.
TRENTIN, D.S.; SILVA, P. E. A.. Participação em banca de Vanessa Radin. Avaliação do mecanismo de efluxo na resistência às fluoroquinolonas em isolados clínicos de Klebsiella pneumoniae formadores de biofilme. 2017. Exame de qualificação (Mestrando em Programa de Pós-Graduação em Ciências da Saúde) - Universidade Federal do Rio Grande.

2.
TRENTIN, D.S.; TARQUINIO, S. B. C.. Participação em banca de Leandro Calcagno Reinhardt. Estudo retrospectivo de candidíase bucal e identificação e suscetibilidade antifúngica de leveduras isoladas de pacientes com candidíase atrófica crônica. 2014. Exame de qualificação (Mestrando em Odontologia) - Universidade Federal de Pelotas.

Trabalhos de conclusão de curso de graduação
1.
TRENTIN, D.S.; RICACHENESVKY, F.. Participação em banca de Uriel Perin Kinskovski.Análise da participação do transportador ZIP3 na virulência de Cryptococcus gattii. 2018. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Biomedicina) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

2.
TRENTIN, D.S.; RICHE, C. V. W.. Participação em banca de Gabriela das Neves.Avaliação do nível de resistência à isoniazida em isolados de Mycobacterium tuberculosis mono e multirrestentes do rio grande do sul. 2018. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Biomedicina) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre.

3.
TRENTIN, D.S.; RIBEIRO, G. A.; BERNARDI, E.. Participação em banca de Kamila Furtado da Cunha.Determinação do perfil de sensibilidade e avaliação da formação de biofilme em Staphylococcus spp. isolados em um hospital de ensino em Pelotas, RS, Brasil. 2017. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Federal de Pelotas.

4.
TRENTIN, D.S.; FUENTEFRIA, A.. Participação em banca de William Lopes.Cohesive geometry of Cryptococcus neoformans distribution mediates flower-like biofilm development. 2017. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

5.
TRENTIN, D.S.; TORRES, B.. Participação em banca de Graziela de Araújo Lock.Infecções bacterianas associadas a biofilmes em superfície bióticas: critérios diagnósticos, tratamentos e perspectivas. 2015. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

6.
TRENTIN, D.S.; OLIVEIRA, T. L.; HARTWIG, D. D.. Participação em banca de Guilherme Roig Pureza Inda.Avaliação da estabilidade de um conjunto de plasmídeos e da toxicidade de proteínas recombinantes de Leptospira interrogans em duas cepas diferentes de Escherichia coli. 2015. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Biotecnologia) - Universidade Federal de Pelotas.

7.
TRENTIN, D.S.; ZIMMER, K. R.. Participação em banca de Daniela Fernandes Gorziza.Caracterização da bactéria Anoxybacillus sp. PC2. 2014. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

8.
Tasca, T.; TRENTIN, D.S.. Participação em banca de Matheus Weiler do Amaral.Antimicrobial activity of plant extrcats from Caatinga. 2011. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul.



Participação em bancas de comissões julgadoras
Concurso público
1.
SEVERO, C. B.; SCHIRMER, H.; TRENTIN, D.S.. Processo seletivo para contratação de professor substituto - área de parasitologia e micologia. 2018. Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre.

Outras participações
1.
TRENTIN, D.S.; BRUST, F.; ANTUNES, A. L. S.; LECKE, S. B.; BICA, C. G.. Montando um laboratório de Análises Clínicas - Análises Microbiológicas - Banca examinadora da disciplina de Gerenciamento de Laboratório - curso de Biomedicina. 2016. Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre.

2.
TRENTIN, D.S.; ARTHUR, R. A.. XXVII Salão de Iniciação Científica da UFRGS - Sessão Microbiologia D. 2015. Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

3.
TRENTIN, D.S.; MEZZARI, A.. XXVI Salão de Iniciação Científica UFRGS - Sessão Diagnóstico Laboratorial em Microbiologia. 2014. Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

4.
TRENTIN, D.S.; POCHMANN, D.; NARDIN, P.. Avaliadora do Concurso Acadêmico de Pesquisa Científica (CAPEC) da 40° Semana Acadêmica de Estudos Farmacêuticos da UFRGS. 2014. Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

5.
TRENTIN, D.S.; KRUGER, R. F.; MCBRIDE, A. J. A.; CAMPOS, V. F.. XV ENPOS - Encontro da Pós-Graduação da UFPel. 2013. Universidade Federal de Pelotas.



Eventos



Participação em eventos, congressos, exposições e feiras
1.
IV ABCF Congress. 2018. (Congresso).

2.
29° Congresso Brasileiro de Microbiologia. MYRICETIN PROTECTS GALLERIA MELLONELLA AGAINST STAPHYLOCOCCUS AUREUS INFECTION AND INHIBITS MULTIPLE VIRULENCE FACTORS. 2017. (Congresso).

3.
1° Danish Brazilian Workshop on "New molecules & New targets: innovative strategies for antimicrobail development".Natural green coating inhibits adhesion of clinically important bacteria. 2015. (Outra).

4.
V STINT Workshop: Understanding the Biocompatibility of Polymeric Surfaces..Antivirulence compound against Staphylococcus aureus. 2015. (Encontro).

5.
2° Workshop Adesão Microbiana e Superfícies. 2014. (Outra).

6.
6th PPGCF UFRGS Meeting and Workshop PBPK Modeling in Translational Research. 2014. (Encontro).

7.
XXII Congreso Latinoamericano de Microbiología (ALAM 2014). Natural products-coated surface inhibits adhesion of pathogenic bacteria. 2014. (Congresso).

8.
3° STINT Workshop on Cell - Biomaterials Interface.Tannins: from Brazilian medicinal plants to antibiofilm and surface coating agents. 2013. (Encontro).

9.
4° Brazilian Conference on Natural Products (4° BCNP). Tannins possessing bacteriostatic effect impair Pseudomonas aeruginosa adhesion and biofilm formation. 2013. (Congresso).

10.
NEMA - Núcleo de Estudos em Microbiologia Aplicada. 2013. (Encontro).

11.
III SIMC - III SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE MICROBIOLOGIA CLÍNICA. 2012. (Simpósio).

12.
Investigating oral biofilms - Advanced workshop. 2012. (Outra).

13.
I SAMP - I WORKSHOP SUL-AMERICANO DE MICROBIOLOGIA POLAR. 2012. (Encontro).

14.
IV Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas.Caatinga plants as source of compounds against bacterial biofilms: Screening, purification and surface coating. 2012. (Encontro).

15.
Montana Biofilm Science & Technology Meeting. 2012. (Encontro).

16.
XXI Congresso Latinoamericano de Microbiologia (XXI ALAM). PLASMA SURFACE MODIFICATION OF POLYSTYRENE INHIBITS BIOFILM FORMATION BY MULTIDRUG RESISTANT BACTERIA. 2012. (Congresso).

17.
26° Congresso Brasileiro de Microbiologia. Stem-bark extracts from Brazilian Caatinga plants prevent Pseudomonas aeruginosa biofilm formation through bacteriostatic properties. 2011. (Congresso).

18.
3° BCNP - Brazilian Conference on Natural Prodcuts. Potential of medicinal plants from the Brazilian semi-arid region (Caatinga) against Staphylococcus epidermidis planktonic and biofilm lifestyles. 2011. (Congresso).

19.
III Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas UFRGS.Antibacterial and antiadhesive properties of stem-bark extracts from brazilian Caatinga plants against Pseudomonas aeruginosa. 2011. (Encontro).

20.
Workshop em Inovação Farmacêutica. 2011. (Outra).

21.
3° Mostra do CNANO & 1° Workshop do CME. 2010. (Outra).

22.
IX Encontro da Sociedade Brasileira de Pesquisa em Materiais. 2010. (Encontro).

23.
25° Congresso Brasileiro de Microbiologia. Bactéria marinha produz metabólito capaz de impedir a formação de biofilme de Staphylococcus epidermidis. 2009. (Congresso).

24.
I Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas UFRGS.Marine bacterium metabolites inhibit biofilm formation of Staphylococcus epidermidis strains susceptible to specific antibiotics. 2009. (Encontro).

25.
VIII Sul Encontro de Controle de Infecção e V Encontro Gaúcho de Microbiologia Aplicada ao Controle de Infecção.Atividade antibiofilme de extrato bacteriano marinho frente a Staphylococcus epidermidis de cateter venoso central. 2009. (Encontro).

26.
XXXVIII Annual Meeting of Brazilian Society for Biochemistry and Molecular Biology - SBBq. Marine Bacterial Extract Activity Against Pathogenic Biofilms. 2009. (Congresso).

27.
1° Simpósio Internacional em Microbiologia em Clínica.Atividade de extratos bacterianos marinhos frente a biofilmes patogênicos. 2008. (Simpósio).

28.
8 Salão de Extensão da Universidade Federal do Rio Grande do Sul.Conjuntivites Bacterianas: Avaliação Laboratorial e Aconselhamento de Pacientes. 2007. (Outra).

29.
I Simpósio de Microbiologia Aplicada. 2007. (Oficina).

30.
XXXIII Semana Acadêmica de Estudos Farmacêuticos. 2007. (Outra).

31.
Simpósio Internacional Advances in the diagnosis and treatment of brain disease. 2006. (Simpósio).

32.
X Salão de Iniciação Científica do Instituto de Cardiologia do Rio Grande do Sul.Angiotensina II e Hipertensão Genética Alteram as Atividades das Enzimas que Degradam Nucleotídeos Extracalulares em Plaquetas de Ratos Adultos. 2006. (Outra).

33.
XVIII Salão de Iniciação Científica - UFRGS.Angiotensina II e Hipertensão genética Alteram as Atividades das Enzimas que degradam Nucleotídeos Extracelulares em Plaquetas de Ratos Adultos. 2006. (Outra).

34.
Fesbe - XX Reunião Anual da Federação de Sociedades de Biologia Experimental na cidade de Águas de Lindóia. Efeito in vitro da angiotensina II sobre a hidrólise extracelular dos nucleotídeos ATP, ADP e AMP por plaquetas de ratos. 2005. (Congresso).

35.
XVII Salão de Iniciação Científica.XVII Salão de Iniciação Científica. 2005. (Outra).

36.
Ciclo de Palestras do alunos da Farmácia ATF 2002/1. 2002. (Outra).

37.
IX Jornada de Genética e Malformações Congênitas. 2002. (Outra).

38.
Semana Acadêmica do Curso de Farmácia e Bioquímica 2002. 2002. (Outra).

39.
Simpósio Sul-Rio-Grandense de Bioética.Simpósio sul-rio-grandense de bioética. 2002. (Simpósio).


Organização de eventos, congressos, exposições e feiras
1.
TRENTIN, D.S.; DIAS, C. ; SCHNEIDER, R. ; COMERLATO, J. ; PEREIRA, R. I. ; PRICHULA, J. . Curso de Extensão - Interfaces da Microbiologia nas diferentes profissões da saúde. 2017. (Outro).

2.
TRENTIN, D.S.; MACEDO, A. J. ; BRUST, F. ; BARROS, M. P. ; BECKER, A. P. ; SILVA, L. N. ; SENGER, F. . 3° Workshop Adesão Microbiana e Superfícies. 2015. (Outro).

3.
TRENTIN, D.S.; FRASSON, A. P. ; SILVA, L. N. ; BECKER, A. P. ; BRUST, F. ; BONFANTI, J. W. ; Tasca, T. ; MACEDO, A. J. . 2° Workshop Adesão Microbiana e Superfícies. 2014. (Outro).

4.
TRENTIN, D.S.; MENEZES, C. ; BRUST, F. ; BONFANTI, J. W. ; BECKENKAMP, A. ; OLIVEIRA, C. B. ; BOROWSKI, R. G. V. ; BIEGELMEYER, R. ; BIANCHI, S. E. ; GNOATTO, S. ; PIELGER, D. ; Tasca, T. . 6th PPGCF UFRGS Meeting and Workshop PBPK Modeling in Translational Research. 2014. (Outro).

5.
TRENTIN, D.S.; BONFANTI, J. W. ; Tasca, T. . 1° Oficina de Inverno da Faculdade de Farmácia da UFRGS. 2013. (Outro).

6.
TRENTIN, D.S.; TRETER, J. ; Tasca, T. ; Macedo, A.J . IV Encontro Anual do Programa de Pós Graduação em Ciências Farmacêuticas. 2012. (Outro).

7.
TRENTIN, D; TRETER, J. ; Zimmer, K.R. ; SOARES, G. V. ; Tasca, T. ; MACEDO, A. J. . 1° Workshop Adesão Microbiana e Superfícies. 2011. (Outro).

8.
TRENTIN, D.S.; TRETER, J. ; FRASSON, A. P. ; Duarte, M. ; Tasca, T. ; Macedo, A.J ; SILVA, M. V. . Oficina da Planta da Caatinga ao Medicamento. 2010. (Outro).

9.
TRENTIN, D.S.; TRETER, J. ; Frasson, A.P. ; Duarte, M. ; Tasca, T. ; Macedo, A.J ; SILVA, M. V. . Workshop Potencial Biotecnológico da Caatinga. 2010. (Outro).



Orientações



Orientações e supervisões em andamento
Dissertação de mestrado
1.
Thayná Fernandes Barros. Correlação entre atividade antimicrobiana e perfil metabolômico em espécies de Combretum e. Início: 2018. Dissertação (Mestrado em BIOCIÊNCIAS) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre. (Orientador).

2.
Hélber Barboza Pinto. Avaliação do efeito combinatório de compostos antivirulência e antibacteriano contra cepas de Staphylococcus aureus MRSA e VISA. Início: 2018. Dissertação (Mestrado em BIOCIÊNCIAS) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior. (Orientador).

Trabalho de conclusão de curso de graduação
1.
Ducival dos Anjos Moraes. PROSPECÇÃO DE BACTÉRIAS MAGNETOSTÁTICAS NO LAGO GUAÍBA E VIABILIDADE DE CULTIVO IN VITRO.. Início: 2017. Trabalho de Conclusão de Curso (Graduação em Biomedicina) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre. (Orientador).

Iniciação científica
1.
Valentina Barros Braccini de Aguiar. Avaliação capacidade de formação de biofilmes e da virulência de Streptococcus pneumoniae em modelo in vivo de larvas de Galleria mellonella. Início: 2018. Iniciação científica (Graduando em Biomedicina) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico. (Orientador).


Orientações e supervisões concluídas
Dissertação de mestrado
1.
Laura Nunes Silva. Fitocompostos capazes de inibir a adesão e outros fatores de virulência bacterianos. 2016. Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Molecular) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior. Coorientador: Danielle da Silva Trentin.

Trabalho de conclusão de curso de graduação
1.
Kimberly Iwanczuk. Galleria mellonella como modelo experimental para infecções causadas por leveduras de interesse médico: uma revisão. 2016. Trabalho de Conclusão de Curso. (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

2.
Natália Morelo. Galleria mellonella: um hospedeiro experimental alternativo para estudos de infecções por bactérias Gram-positivas. 2016. Trabalho de Conclusão de Curso. (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

3.
Hernando Salles Rosa. Seleção de moléculas visando o reposicionamento de fármacos com potencial ação sobre o biofilme de Pseudomonas aeruginosa (Co-orientadora). 2013. Trabalho de Conclusão de Curso. (Graduação em Farmácia) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

Iniciação científica
1.
Andressa Scherer. Avaliação de compostos para atividade anti-α-hemolisina de S. aureus e padronização de ensaios em larvas de Galleria mellonella. 2017. Iniciação Científica. (Graduando em Biomedicina) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

2.
Daniela Fernandes Gorziza.  Estudo da atividade antibiofilme de extratos de bactéria isolada de ambiente marinho.. 2009. Iniciação Científica. (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

3.
Fernando Bueno Ferreira Fonseca de Fraga. Atividade antibiofilme de metabólitos produzidos por bactérias isoladas de esponjas marinhas. 2008. Iniciação Científica. (Graduando em Ciências Biológicas) - Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

Orientações de outra natureza
1.
Émilly Giacomelli Bragé. Orientadora de monitoria na disciplina de Microbiologia - Enfermagem UFCSPA. 2018. Orientação de outra natureza. (Enfermagem) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre. Orientador: Danielle da Silva Trentin.

2.
Lahanna Ribeiro. Orientadora de monitoria na disciplina de Microbiologia - Enfermagem UFCSPA. 2018. Orientação de outra natureza. (Enfermagem) - Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre. Orientador: Danielle da Silva Trentin.



Inovação



Projetos de pesquisa


Outras informações relevantes


1 - Coordenadora de projeto de pesquisa (12/2014-12/2017):CNPq Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico MCTI/CNPQ/Universal 14/2014 - Faixa A - até R$ 30.000,00 
------
2. Aprovada no concurso para Professor Adjunto: 
(a) Departamento de Ciências Básicas da Saúde da Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (Área: Microbiologia) conforme D.O.U. n° 192 - 5/10/2016 (Edital nº 36, de 20/05/2016) (1° lugar).
(b) Centro de Ciênicas Químicas, Farmacêuticas e de Alimentos da Universidade Federal de Pelotas (Área: Bacteriologia, Micologia, Parasitologia, Citologia, Biologia celular e Molecular) conforme D.O.U. nº 117 - 21/06/2016 (Edital 007 de 19 de fevereiro de 2016) (2° lugar); 
(c) Faculdade de Medicina da Universidade Federal de Rio Grande (Área: Microbiologia) conforme D.O.U. nº 45 - 08/03/2016 (Edital 026 de 22 de outubro de 2015) (2° lugar); 
(d) Departamento de Microbiologia e Parasitologia da Universidade Federal de Santa Maria (Área: Microbiologia - Biologia e Fisiologia de Micro-organismos) conforme D.O.U. nº 245 - 23/12/2015 (Edital 075 - 11/06/2015) (2° lugar); 
(e) Instituto de Biologia da Universidade Federal de Pelotas (Área: Microbiologia e Imunologia) conforme D.O.U nº 76 - 22/04/2013 (Edital CGIC nº 002 de 2013) (3° lugar).
------
3 - Aprovada no concurso para Professor Substituto do Instituto de Biologia da Universidade Federal de Pelotas (Área: Microbiologia e Imunobiologia) conforme D.O.U. nº 198 - 11/10/2013 (Edital CGIC nº 081 de 2013) (1° lugar).
------
4 - Selecionada para Professora assistente no Centro de Ciências da Vida e da Saúde da Universidade Católica de Pelotas (Área: Imunologia - Edital 006/2015)
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5 - Proficiência em Leitura de Língua Estrangeira: inglês e espanhol por prova da UFRGS
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6 - Participação do PROJETO 103- CAPES/PROCAD-NF 2008. Destino: Universidade Estadual de Santa Cruz - Ilhéus-BA (julho-agosto de 2009)



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